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- Dans les cellules leucémiques, la navette de macromolécules, telles que quelques protéines suppressives de tumeurs entre le noyau et le cytoplasme, est dérégulée. Une mauvaise localisation de ces protéines les rend inactives, ce qui entraîne une croissance incontrôlée des cellules leucémiques. Nous pouvons déterminer l’emplacement aberrant de ces protéines en générant la fraction cytoplasmique et nucléaire à partir de cellules leucémiques.
Commencez par prendre le volume souhaité de cellules leucémiques dans un tube à microfuge et centrifugez pour granuler la cellule. Remettez la pastille en suspension dans un tampon de lyse hypotonique, puis ajoutez la concentration souhaitée de détergent. Le tampon de lyse hypotonique provoque le gonflement des cellules et la rupture de la membrane plasmique, laissant la membrane nucléaire intacte, isolant ainsi les fractions cytoplasmiques. Le détergent aide à l’extraction des protéines des organites cytoplasmiques.
Centrifugez les cellules lysées en suspension et transférez le surnageant dans un tube frais. Le surnageant contient la fraction cytoplasmique de la cellule. Pour préparer la fraction nucléaire, remettre en suspension la pastille restante dans le tampon de lyse complet et ajouter du détergent. Centrifuger et recueillir la fraction nucléaire présente dans le surnageant dans un tube à microfuge. Conservez les fractions cytoplasmiques et nucléaires à moins 80 degrés Celsius pour une analyse plus approfondie. Dans le protocole suivant, nous démontrerons la génération de fractions subcellulaires à partir de cellules leucémiques.
Une fois la stimulation et/ou l’incubation du traitement médicamenteux terminées, transfert des cellules dans des tubes et des pastilles de microfuge de 1,5 millilitre étiquetés individuellement par centrifugation à 200 fois g pendant 5 minutes à 4 degrés Celsius. Après avoir jeté le surnageant, remettre en suspension la pastille cellulaire dans 1 millilitre de PBS glacé avec des inhibiteurs de phosphatase. Centrifuger à 200 fois g pendant 5 minutes à 4 degrés Celsius. Retirez le surnageant et conservez ces granules d’extrait cellulaire entier sur de la glace pour d’autres préparations.
Pour préparer des fractions cytoplasmiques, remettez doucement en suspension les granules cellulaires dans 50 microlitres de 1 X tampon hypotonique. Pour permettre aux cellules de gonfler, incubez-les sur de la glace pendant 15 minutes. Après avoir effectué un gradient de détergent pour déterminer la concentration optimale de détergent à utiliser pour un type de cellule spécifique, ajoutez 0,8 à 2,5 microlitres de détergent dans chaque échantillon et utilisez le vortex sur le réglage le plus élevé pendant 10 secondes.
Pour vérifier la lyse cellulaire, observez les cellules à l’aide d’un microscope à contraste de phase avant et après l’ajout de détergent. Toutes les cellules ont un noyau sombre et dense, entouré d’un cytoplasme qui apparaît comme un halo lumineux. Une fois lysés, centrifugez les échantillons à 14 000 fois g pendant 30 secondes à 4 degrés Celsius. Avec précaution, sans déranger la pastille, transférez le surnageant dans un tube de microfuge pré-refroidi et étiqueté et stockez cette fraction cytoplasmique à moins 80 degrés Celsius jusqu’à une analyse plus approfondie.
Assurer l’élimination complète de la fraction cytoplasmique pour éviter la contamination de la fraction nucléaire.
Au boulet restant, qui contient la fraction nucléaire, ajoutez 50 microlitres de tampon de lyse complet et remettez en suspension en pipetant de haut en bas. Pour solubiliser les protéines associées à la membrane nucléaire, ajoutez 2,5 microlitres de détergent, faites un vortex sur le réglage le plus élevé pendant 10 secondes et incubez sur de la glace pendant 30 minutes. Vortex sur le réglage le plus élevé pendant 30 secondes et centrifuger. Ensuite, transférez le surnageant dans un tube de microfuge pré-refroidi et étiqueté, et stockez cette fraction nucléaire à moins 80 degrés Celsius jusqu’à une analyse plus approfondie.