Cisaillement de la chromatine : une méthode pour générer des fragments de chromatine à l’aide de la digestion enzymatique

0 vues4:57 min • April 30th, 2023

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- Les facteurs de transcription sont des protéines qui se lient à un site spécifique de l’ADN pour réguler l’expression des gènes. Des erreurs dans les facteurs de transcription modifient cette activité, entraînant une surexpression des gènes, ce qui provoque le cancer. Pour comprendre le rôle des facteurs de transcription et de la régulation des gènes, nous pouvons effectuer un test d’immunoprécipitation de la chromatine ou CHIP, et le cisaillement de la chromatine est une étape importante dans le flux de travail CHIP.

Pour le cisaillement de la chromatine, stabilisez le complexe ADN-protéine en ajoutant du formaldéhyde. Le formaldéhyde réticule les protéines à la séquence d’ADN associée en formant des liaisons covalentes. Ensuite, utilisez un tampon de lyse approprié pour lyser les cellules afin de libérer la chromatine contenant les complexes ADN-protéines réticulés et centrifugez. Cisailler la chromatine à l’aide de l’enzyme nucléase micrococcique. Cette enzyme clive la chromatine entre les nucléosomes et digère les extrémités libres de l’ADN. Centrifugez le mélange et récupérez le surnageant.

Chargez le surnageant sur du gel d’agarose TBE pour analyser la taille appropriée des fragments d’ADN. Appliquez un champ électrique à travers le gel, ce qui fait que l’ADN de la chromatine chargé négativement se déplace vers l’anode. Des fragments plus petits se déplacent plus bas dans le gel. La chromatine cisaillée apparaît sous la forme d’une tache dans le gel. Dans le protocole suivant, nous cisaillerons la chromatine de la lignée cellulaire de leucémie myéloïde chronique à l’aide de la sonication.

- Pour commencer, remplissez un tube de 1,5 millimètre avec 1 millilitre de formaldéhyde à 37 %. Ensuite, remplissez un autre tube de 1,5 millilitre avec 1 millilitre de glycine 1,25 molaire et un tube de 5 millilitres avec 4 millilitres de PBS. Ensuite, après la stimulation des cellules, faites tourner les cellules selon le protocole de texte, et suspendez à nouveau les cellules dans 500 microlitres de PBS et placez le tube dans une boîte remplie de glace. Ajoutez 13,5 % de microlitres de formaldéhyde à 37 % dans les cellules et mélangez en pipetant de haut en bas.

Ensuite, incubez la suspension à température ambiante. Après cela, ajoutez 57 microlitres de glycine de 1,25 molaire pour arrêter la fixation et laissez cette suspension incuber à température ambiante pendant cinq minutes. Immédiatement après la période d’incubation, placez les cellules sur de la glace et centrifugez-les à 500 fois g pendant cinq minutes à 4 degrés Celsius. Puis aspirez le surnageant. Ensuite, lavez les cellules deux fois avec 1 millilitre de PBS glacé à 200 fois g pendant cinq minutes à 4 degrés Celsius et retirez le surnageant. Remettez en suspension la pastille cellulaire dans 5 millilitres de tampon de lyse-1 en pipetant de haut en bas.

Ensuite, mettez les échantillons sur de la glace et incubez-les en secouant pendant 10 minutes. Après cela, centrifugez les tubes à 500 fois g pendant cinq minutes à 4 degrés Celsius. Ensuite, utilisez la pipette pour retirer soigneusement le surnageant. Homogénéisez les cellules dans 5 millilitres de tampon de lyse-2 et pipetez de haut en bas pour mélanger. Ensuite, incubez les cellules sur de la glace pendant 10 minutes en secouant. Après la période d’incubation, centrifugez les tubes à 500 fois g pendant cinq minutes à 4 degrés Celsius et retirez soigneusement le surnageant.

Ensuite, mettez à nouveau en suspension la pastille cellulaire dans le tampon de cisaillement-1 avec un inhibiteur de protéase 1X. Ensuite, incubez la suspension cellulaire sur de la glace pendant 10 minutes. Transférez 140 microlitres de suspension cellulaire dans des tubes de sonicateur, en prenant soin d’éviter la formation de bulles d’air. Placez les tubes dans un ultrasoniseur focalisé à 7 degrés Celsius et cisaillez pendant dix à sept minutes et demie. Transférez la suspension cellulaire dans des tubes de 1,5 millilitre. Centrifugez les échantillons à 15 700 fois g pendant 10 minutes à 4 degrés Celsius et recueillez le surnageant dans un nouveau tube.

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Dernière mise à jour : 15 août 2026