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- Les modèles organotypiques 3D du cancer colorectal sont des cultures in vitro conçues pour imiter les microenvironnements tumoraux in vivo. La culture contient souvent des cellules stromales, comme des fibroblastes, co-cultivées avec des cellules épithéliales du cancer colorectal, dans un microenvironnement de matrice extracellulaire approprié.
Dans les cultures établies, les cellules tumorales à potentiel métastatique envahissent la matrice extracellulaire. Pour isoler ces cellules envahissantes, il faut d’abord traiter le modèle organotypique avec du formaldéhyde pour fixer les cellules et la matrice extracellulaire. Incuber avec de l’alcool pour déshydrater l’échantillon.
Ensuite, incorporez-le dans de la cire de paraffine liquide pour générer un bloc tissulaire. À l’aide d’un ultramicrotome, on obtient des tronçons finement tranchés. Montez les sections sur une diapositive en verre appropriée.
Ajouter du xylène pour déparaffiniser les sections. Séquentiellement, incuber les sections à des concentrations décroissantes d’éthanol pour réhydrater les échantillons.
Traiter avec Cresyl Violet pour colorer et différencier les cellules cancéreuses colorectales du microenvironnement. Placez la lame de vitrail face vers le bas sur la platine du microscope. À l’aide d’un logiciel approprié, identifiez les cellules à microdisséquer et délimitez les bords. Tirez le laser pour couper la section en surbrillance et collecter la partie microdisséquée.
Dans le protocole suivant, nous montrerons l’isolement de cellules cancéreuses colorectales à partir d’un modèle de co-culture organotypique 3D par microdissection laser.
- Retirez tout l’organotypique, y compris la feuille de nylon, du puits et placez-le sur du film alimentaire. Coupez en deux la feuille d’organotypique et de nylon à l’aide d’un scalpel jetable propre et fixez les deux moitiés dans du formaldéhyde pendant 24 heures à température ambiante. Remplacez le formaldéhyde par de l’éthanol à 70 % après 24 heures et laissez reposer toute la nuit avant de l’enrober dans la paraffine, de sectionner et de colorer.
Pour effectuer une microdissection laser, sectionnez d’abord l’organotypique à 10 microns d’épaisseur sur des lames montées sur membrane. Après avoir traité les sections comme décrit dans le protocole de texte, préparez-vous à effectuer une microdissection laser à l’aide de la plate-forme choisie.
Placez la lame de verre avec la section colorée à microdisséquer face vers le bas sur la platine du microscope. Montez un tube de microcentrifugation de 0,5 millilitre dans la cassette de collecte et ajoutez 50 microlitres de tampon de lyse cellulaire dans le capuchon dans lequel le tissu microdisséqué s’accumulera. En vision directe, utilisez le joystick pour identifier le tissu d’intérêt, et à l’aide de l’interface logicielle, annotez la section organique colorée, en mettant en évidence les cellules à microdisséquer sur le front d’invasion tumorale.
Demandez au laser de tirer, ce qui devrait à la fois découper la section en surbrillance et propulser le tissu microdisséqué dans le capuchon du tube de la microcentrifugeuse. Procéder au traitement des échantillons par une méthode appropriée pour extraire l’analyte d’intérêt.