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- La morphologie du substrat influence grandement le comportement et les réponses métastatiques des cellules cancéreuses. Un réseau dynamique de cytosquelette d’actine fournit un soutien structurel aux cellules et médie le mouvement cellulaire. De grands complexes protéiques associés à la membrane, appelés adhérences focales, relient le cytosquelette à la matrice extracellulaire, facilitant ainsi la propagation cellulaire.
Pour commencer la coloration, prenez une culture de cellules cancéreuses et traitez-les avec du paraformaldéhyde pour fixer et perméabiliser les cellules. Maintenant, incubez les cellules avec un réactif d’amplification du signal contenant des protéines pour préparer les cellules à réduire la coloration de fond. Ajoutez des anticorps primaires anti-vinculine qui se lient à la vinculine, l’une des protéines du complexe d’adhésion focale.
Ensuite, incubez l’échantillon avec un anticorps secondaire conjugué à un colorant fluorescent ciblant l’anticorps primaire. Enfin, traitez les cellules avec des conjugués de phalloïdine marqués fluorescents qui se lient sélectivement aux filaments d’actine du cytosquelette. Observez les cellules à l’aide d’un microscope confocal à balayage laser pour étudier leurs signaux fluorescents.
Les cellules à la morphologie bien étalée présentent des fibres d’actine définies et présentent des adhérences focales distinctes et allongées contenant de la vinculine. À l’inverse, les cellules mal étalées ne possèdent pas de filaments d’actine définis, mais présentent des adhérences focales ponctuées contenant de la vinculine. Dans le protocole suivant, nous ferons la démonstration d’un test d’immunofluorescence pour étudier le cytosquelette et l’organisation de l’adhésion focale dans les cellules cancéreuses primaires du côlon.
- Amener les substrats à immunocolorer dans le capot laminaire et retirer le milieu de culture. Ensuite, rincez les substrats avec une solution saline tamponnée au phosphate, ou PBS, et fixez les cellules avec 4 % de paraformaldéhyde dans du PBS pendant 20 minutes à température ambiante. Lavez les substrats avec du PBS pendant cinq minutes, soit trois fois au total. Ensuite, incubez les substrats avec 500 microlitres d’amplificateur de signal pendant 30 minutes avant de rincer avec du PBS.
Ensuite, incubez les cellules avec un anticorps monoclonal anti-vinculine à une dilution de 1 à 250 dans du PBS pendant 45 minutes à température ambiante. Ensuite, lavez les substrats avec du PBS pendant cinq minutes au total, trois fois au total. Incuber les échantillons avec un anticorps secondaire Alexa Fluor 488 chèvre IgG anti-souris à une dilution de 1 à 200 dans du PBS à température ambiante pendant 30 minutes. Ensuite, lavez à nouveau les substrats avec du PBS pendant cinq minutes au total, soit trois fois au total.
Pour visualiser la structure de l’actine F, incubez les cellules avec des conjugués tétraméthylrhodamine-phalloïdine à une concentration de 50 microlitres par millilitre pendant 45 minutes à température ambiante. Ensuite, lavez à nouveau les supports comme auparavant. Enfin, procédez à l’imagerie des échantillons à l’aide d’un microscope laser à balayage confocal.
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