JoVE Encyclopedia of Experiments
Microbiologie
0 vues • 3:53 min • September 26th, 2025
Commencez par inoculer une colonie de bactéries génétiquement modifiées dans un milieu liquide.
Ces bactéries expriment une protéine de fusion fluorescente dans la membrane externe, une couche protectrice externe.
Incuber pour que les bactéries libèrent des vésicules extracellulaires (VE), des nanostructures membranaires impliquées dans la communication intercellulaire, qui incorporent la protéine fluorescente.
Transférez la culture dans une bouteille et centrifugez à basse vitesse pour granuler les cellules.
Transférez le surnageant contenant les VE, les protéines cellulaires et les débris cellulaires. Centrifugez à grande vitesse et retirez le surnageant contenant les débris.
Filtrez le surnageant à travers une membrane pour éliminer les bactéries et les débris restants.
Inoculer un échantillon sur de la gélose et l’incuber. L’absence de formation de colonies bactériennes confirme l’absence de bactéries.
Transférez la solution dans un appareil d’ultrafiltration doté d’une membrane semi-perméable et centrifugez-la pour piéger les VE tout en éliminant les protéines plus petites.
Collectez les VE concentrés dans un tube pour une analyse en aval.
Commencez par inoculer des colonies uniques d’Escherichia coli dans 250 à 1000 millilitres de Luria-Bertani, ou bouillon LB, à l’aide d’une boucle stérile. Ensuite, incubez la culture en aérobie dans un incubateur à agitation à 300 rotations par minute et 37 degrés Celsius. Après 48 heures d’incubation, clarifiez le milieu de culture bactérienne en transférant les cultures cellulaires dans des flacons de centrifugeuse en polypropylène propres de 500 millilitres à centrifuger dans un rotor de grande capacité à angle fixe à quatre degrés Celsius et 5 000 fois G pendant 15 minutes.
Transférez le surnageant dans des flacons de centrifugation propres en versant soigneusement dans la centrifugeuse à 10 000 fois G pendant 15 minutes. Ensuite, transférez le surnageant dans un dispositif de filtration à vide en polyéthersulfone de 0,2 micron de taille appropriée et connectez le dispositif de filtration à une paroi sous vide. Si le taux de filtration diminue considérablement, déplacez le matériau non filtré vers un nouvel appareil.
Le média filtré peut être stocké à quatre degrés Celsius pendant la nuit ou peut être traité immédiatement. Pour vérifier l’élimination complète des cellules viables, étalez une aliquote du surnageant filtré sur des plaques de gélose appropriées et assurez-vous de l’absence de colonies après l’incubation dans des conditions optimales pour la souche bactérienne. Pour concentrer le milieu filtré d’un volume de 100 millilitres, chargez 90 millilitres de milieu de culture filtré sur le réservoir du dispositif d’ultrafiltration centrifuge avec une coupure de poids moléculaire de 100 kilodaltons et centrifugez le milieu dans un rotor à godets oscillants à quatre degrés Celsius et 2 000 fois G pendant des intervalles de 15 à 30 minutes jusqu’à ce que le volume du milieu dans le réservoir supérieur ait été concentré à moins de 0,5 millilitre.
Pour remplir le réservoir avec le milieu de culture filtré restant, retirez le flux au bas de l’appareil pour le rééquilibrer. Si la viscosité du milieu concentré dans le réservoir est visiblement augmentée, diluez le milieu avec du PBS et reconcentrez-le par centrifugation pour réduire toute vésicule non extracellulaire, ou protéines EV, plus petite que la limite de poids moléculaire de 100 kilodaltons. Ensuite, transférez le milieu concentré dans un tube de liaison à faible teneur en protéines pour le conserver à quatre degrés Celsius pendant la nuit.
Cet article décrit une méthode permettant d'isoler des vésicules extracellulaires (EVs) à partir de bactéries génétiquement modifiées exprimant une protéine de fusion fluorescente. Le processus comprend plusieurs étapes de centrifugation et de filtration afin de garantir l'élimination des cellules viables et de concentrer les vésicules extracellulaires pour des analyses ultérieures.
L'isolement des vésicules extracellulaires (EV) bactériennes permet une détection mécanistique des risques en phase de découverte précoce, en fournissant une source évolutible de nanoparticules dérivées de membranes pour la validation de cibles et le criblage phénotypique. La méthode soutient le développement d'essais grâce à un enrichissement standardisé et reproductible des EV, réduisant ainsi la variabilité des analyses fonctionnelles en aval. Cela positionne la technique comme un outil translationnel pour évaluer des thérapeutiques ou des candidats vaccins d'origine bactérienne avec une fiabilité prédictive améliorée.
La méthode s'inscrit dans le continuum de découverte allant de la validation précoce de cibles jusqu'à l'identification de composés candidats, où les VÉ bactériennes servent de sondes mécanistiques ou de vecteurs de livraison. Elle permet des flux de travail de criblage en fournissant des fractions de VÉ purifiées et quantifiables pour des lectures fonctionnelles. Le processus soutient les analyses grâce à la détection fluorescente ou biochimique des VÉ enrichies, facilitant ainsi l'analyse comparative entre différentes conditions. La réutilisation à grande échelle est favorisée par la reproductibilité et la standardisation du protocole entre différentes souches bactériennes.
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Dernière mise à jour : 29 août 2026