Visualisation de la motilité bactérienne à l’aide d’un milieu semi-solide enrichi en colorant redox

Commencez avec une plaque de culture contenant un échantillon de souche bactérienne.

À l’aide d’une aiguille d’inoculation stérilisée, prélevez une colonie isolée.

Dans des conditions stériles, inoculez cette colonie dans un milieu semi-solide complété par un colorant redox incolore. Le milieu semi-solide limite la diffusion passive des bactéries.

Préparez des tubes témoins, un témoin négatif avec une souche bactérienne non motile dépourvue de flagelles, et un témoin positif avec une souche bactérienne flagellée très mobile.

Incuber tous les tubes inoculés pour favoriser la croissance et la motilité des bactéries.

Pendant l’incubation, des bactéries métaboliquement actives réduisent le colorant redox incolore en un produit insoluble de couleur rouge.

Les bactéries mobiles prolifèrent et migrent à travers le milieu semi-solide à l’aide de leurs flagelles, créant une zone rouge diffuse rayonnant vers l’extérieur dans le milieu environnant.

Les bactéries non mobiles prolifèrent mais ne migrent pas ; La zone rouge reste confinée au site de ponction.

Cela permet de distinguer visuellement les souches bactériennes non mobiles et mobiles.

Prélevez des colonies uniques de bactéries dans des plaques de gélose et inoculancez-les dans les deux milieux semi-solides par perforation à l’aide d’aiguilles d’inoculation. N’oubliez pas d’inclure les déformations non modales comme témoins négatifs et les déformations modales comme témoins positifs.

Incuber les tubes à 37 degrés Celsius et observer les résultats après 24 à 48 heures d’incubation. Si seule la ligne de perforation est rouge, caractérisez la bactérie comme non modale.

Si la couleur rouge se propage vers l’extérieur le long de la ligne de ponction, caractérisez la bactérie comme modale.