Inactivation de bactéries à l’aide d’un mononucléotide de flavine activé par la lumière

0 vues3:19 min • September 26th, 2025

Commencez par inoculer une bactérie pathogène dans un tube contenant un milieu liquide.

Incuber pour favoriser la prolifération bactérienne, puis transférer la culture dans des tubes frais.

Faites tourner les cellules en pastilles et jetez le surnageant.

Remettre les granules bactériennes en suspension dans des solutions tampons contenant des concentrations croissantes de flavine mononucléotide (FMN), un photosensibilisant et une solution tampon sans FMN pour servir de contrôle.

Mélangez soigneusement le contenu du tube et transférez les suspensions dans des tubes en verre.

Exposez les tubes à la lumière visible pour photoactiver la FMN, qui réagit avec l’oxygène moléculaire pour générer des espèces réactives de l’oxygène (ROS).

Les ROS endommagent les composants cellulaires bactériens, réduisant ainsi la viabilité bactérienne.

Transférez les aliquotes de l’échantillon sur un milieu solide, étalez-les uniformément et incubez pour permettre aux bactéries viables survivantes de se développer en colonies.

Après l’incubation, quantifier les colonies et calculer le pourcentage de réduction de la viabilité bactérienne par rapport au témoin afin d’évaluer l’effet dose-dépendant de la FMN.

Inoculez une colonie de Staphylococcus aureus dans 10 millilitres de bouillon de lysogénie dans un tube à essai à vis de 15 millilitres. Cultivez la culture à 37 degrés Celsius pendant 16 heures dans un agitateur. Transférez 0,5 millilitre de la culture dans un tube à centrifuger de 1,5 millilitre.

Diluez la culture à une densité optique de 0,5 à 600 nanomètres en ajoutant de l’eau stérilisée. Ensuite, transférez 0,5 millilitre de la culture dans un tube à centrifuger de 1,5 millilitre. Centrifuger à 14 000 G pendant 10 minutes et décanter le surnageant.

Ajoutez un millilitre de solution tamponnée FMN à la pastille de cellule et au vortex. Pour un contrôle irradié, ajoutez un millilitre de tampon phosphate. Transférez un millilitre de solution cellulaire bactérienne contenant 30 micromolaires de FMN et un tampon phosphate dans des tubes en verre.

Placez-les pour un rayonnement sous une lumière violette à 10 watts par mètre carré pendant 30 minutes. Ensuite, transférez un millilitre de solution cellulaire bactérienne contenant 30, 60 et 120 micromolaires de FMN et de tampon phosphate dans des tubes en verre. Irradiez avec de la lumière bleue pendant 120 minutes à 20 watts par mètre carré.

De plus, irradiez un tube contenant un millilitre de FMN de 120 micromolaires pendant 60 minutes. Après l’irradiation, ajouter 0,2 millilitre de la solution réactionnelle sur une plaque de gélose lurie. Étalez la solution à l’aide d’une tige de verre en forme de L et incubez toute la nuit à 37 degrés Celsius.

Le lendemain, calculez le nombre de plaques viables et le taux d’inactivation de Staphylococcus aureus.

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Dernière mise à jour : 29 août 2026