Dosage par biocapteur bactérien pour la détection du mercure biodisponible dans des conditions anaérobies

0 vues4:26 min • October 30th, 2025

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Commencez par une configuration de test contenant des flacons placés à l’intérieur d’une chambre anaérobie.

Chaque flacon contient un milieu complété par du nitrate de sodium, des ions mercure et des concentrations variables de sulfate de magnésium.

Faites pivoter la configuration pour mélanger les composants, puis incuber.

Pendant l’incubation, le sulfate de magnésium favorise la formation de complexes de mercure non biodisponibles, réduisant les ions mercure libres et biodisponibles d’une manière dépendante de la concentration.

Ensuite, ajoutez des biocapteurs induits, des bactéries génétiquement modifiées portant un plasmide, et mélangez.

Le plasmide contient un régulateur transcriptionnel sensible au mercure et un promoteur lié à un gène rapporteur fluorescent.

Dans des conditions anaérobies, la bactérie utilise le nitrate pour respirer.

Les ions mercure libres pénètrent dans les cellules, se lient au régulateur transcriptionnel et activent le gène fluorescent, produisant des protéines fluorescentes.

Transférez les aliquotes de chaque flacon dans une plaque à plusieurs puits.

À l’aide d’un lecteur de plaques, mesurez l’intensité de la fluorescence.

Une diminution de la fluorescence avec l’augmentation des concentrations de sulfate de magnésium confirme la capacité du biocapteur à détecter les changements dans le mercure biodisponible.

Avant de commencer l’expérience, vérifiez le moniteur anaérobie pour vous assurer qu’il n’y a pas d’oxygène dans la chambre anaérobie. Concevez la disposition des plaques selon un gabarit à 96 puits. Pour mener des expériences dans des répliques techniques de trois, cela permettra d’effectuer 32 traitements différents, ce qui est mieux représenté par une grille de quatre par huit pour mettre en place les flacons.

Configurez la grille quatre par huit selon la disposition de la plaque de test. Ensuite, placez des flacons standard de PTFE de 7 millilitres dans le plateau. Les flacons ne doivent être manipulés qu’en manipulant l’extérieur du flacon.

Ajouter le volume du milieu d’exposition dans chaque flacon correspondant à chaque traitement. À chaque flacon, ajoutez le volume correspondant de la variable chimique à tester selon la disposition de la plaque. Ajoutez maintenant du nitrate dans chaque flacon de manière à ce que la concentration finale soit de 200 micromolaires.

Exclure cette étape pour les ébauches de traitement constitutifs des biocapteurs.

 

Pour ajouter du mercure dans les flacons, prenez d’abord le stock de quatre à huit micromolaires et secouez bien. Diluer la solution et le milieu d’exposition dans un flacon de PTFE de 7 millilitres à une concentration de 100 à 250 nanomolaires pour obtenir une solution de mercure fonctionnelle.

À partir de cette solution de travail, ajoutez du mercure dans les flacons requis selon la disposition de la plaque. Après avoir ajouté le mercure ou le cadmium, secouez manuellement la plaque dans un mouvement orbital. L’expérience peut être interrompue maintenant en fonction du temps nécessaire pour que le mercure ou le cadmium se spécifie en solution.

Lorsque l’expérience reprend, pipetez doucement le stock de biocapteurs d’avant en arrière pour assurer l’homogénéité. Ajoutez ensuite 100 microlitres de biocapteur dans chaque flacon et secouez manuellement la plaque comme précédemment. Réchauffez le lecteur de plaques à 37 degrés Celsius et configurez une course cinétique pendant dix heures avec des lectures toutes les deux virgule cinq à cinq minutes.

Une secousse orbitale entre les lectures a permis de prendre des mesures de fluorescence avec une excitation de fluorescence de 440 nanomètres et une émission de 500 nanomètres. Maintenant, pipetez 200 microlitres de chaque flacon en PTFE dans la grille quatre par huit dans les puits correspondants de la plaque à 96 puits.

Pipetez cinq fois d’avant en arrière avant de transférer chaque 200 microlitres. Placez la plaque à 96 puits dans le plateau du lecteur de plaques. Placez ensuite le couvercle sur la plaque à 96 puits et commencez le dosage.

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Dernière mise à jour : 15 août 2026