Enrichissement de lipoprotéines bactériennes à l’aide d’une séparation de phase détergente non ionique

0 vues4:16 min • October 30th, 2025

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Prenez un lysat bactérien contenant des protéines hydrophiles, des lipoprotéines et des agrégats de protéines.

Ajoutez un détergent froid non ionique capable de séparer les phases à des températures plus chaudes.

Incuber sur glace et mélanger périodiquement. Le détergent se lie à la fraction lipidique de la lipoprotéine, formant des complexes protéine-détergent.

Réchauffez le mélange pour induire la séparation des phases. Les lipoprotéines se concentrent dans la phase détergente, tandis que les protéines hydrophiles restent dans la phase aqueuse.

Centrifuger à température ambiante pour maintenir la séparation biphasique.

Jetez la phase aqueuse, ajoutez un tampon froid à la phase détergente et mélangez.

Répétez le cycle de refroidissement, de réchauffement et de centrifugation pour enrichir les lipoprotéines.

Ensuite, ajoutez un tampon froid et centrifugez à basse température pour granuler les agrégats non lipoprotéiques.

Transférez le surnageant dans un tube contenant un solvant précipitant les protéines et incubez à une température inférieure à zéro pour précipiter les lipoprotéines.

Centrifuger à température ambiante et jeter le surnageant.

Les lipoprotéines précipitées sont prêtes pour les études en aval.

Compléter le surnageant avec le tensioactif TX-114 jusqu’à une concentration finale de 2 % en ajoutant un volume égal de tensioactif à 4 % dans du TBSE glacé. Incuber le surnageant supplémenté sur de la glace pendant une heure, en le mélangeant par inversion toutes les 15 minutes. Transférez le tube dans un bain-marie à 37 degrés Celsius et incubez pendant 10 minutes pour induire la séparation de phase.

Centrifugez l’échantillon à 10 000 fois g pendant 10 minutes à température ambiante pour maintenir la séparation biphasique. Pipetez doucement la phase aqueuse supérieure et jetez-la. Ajoutez du TBSE glacé à la phase tensioactive inférieure pour remplir le tube à son volume d’origine et retournez pour mélanger.

Incuber sur glace pendant 10 minutes. Après l’incubation, transférez le tube dans un bain-marie à 37 degrés Celsius et incubez pendant 10 minutes pour induire la séparation de phase, puis centrifugez à 10 000 fois g pendant 10 minutes à température ambiante. Après avoir répété ces étapes une fois de plus pour un total de trois séparations, retirez la phase aqueuse supérieure et jetez-la.

Retirez la pastille de protéines précipitées qui s’est formée au cours des extractions en ajoutant un volume de TBSE glacé à la phase tensioactive. Centrifugez à quatre degrés Celsius et 16 000 fois g pendant deux minutes pour granuler la protéine insoluble. Transférez immédiatement le surnageant dans un nouveau tube de microcentrifugation de 2,0 millilitres contenant 1 250 microlitres d’acétone à 100 %.

Mélangez l’échantillon par inversion et incubez pendant une nuit à moins 20 degrés Celsius pour précipiter la protéine. Le lendemain, centrifugez l’échantillon à 16 000 fois g pendant 20 minutes à température ambiante pour granuler les lipoprotéines en faisant attention à l’orientation du tube. Lavez la pastille deux fois avec de l’acétone à 100 % avant de la décanter et de laisser l’échantillon sécher à l’air.

Ensuite, ajoutez 20 à 40 microlitres de Tris-HCL de 10 millimolaires, pH 8,0, et remettez complètement la pastille en suspension en pipetant de haut en bas contre la paroi avec les lipoprotéines précipitées.

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Dernière mise à jour : 22 août 2026