Procédure de purification d’une protéine marquée à la polyhistidine à partir de Streptococcus mutans

0 vues4:28 min • October 30th, 2025

Prenez une culture de Streptococcus mutans exprimant une protéine marquée à la polyhistidine sécrétée dans le milieu.

Centrifugez la culture et collectez le surnageant riche en protéines.

Ajouter du sulfate d’ammonium et incuber en remuant pour précipiter les protéines en réduisant leur solubilité.

Transférez la solution dans un tube, centrifugez-le et jetez le surnageant.

Remettez la pastille en suspension dans un tampon de liaison contenant des sels et une faible teneur en imidazole pour stabiliser la protéine.

Dialysez la solution contre un tampon de liaison frais pour éliminer l’excès de sels.

Centrifugez la solution dialysée pour en faire des débris insolubles dans les pastilles, puis filtrez le surnageant.

Mélangez le filtrat avec de la résine d’affinité chargée de nickel et incubez pour permettre la liaison sélective de la protéine marquée à la polyhistidine aux ions nickel.

Chargez le mélange sur la colonne de chromatographie et lavez-le avec un tampon de liaison pour éliminer les protéines non liées.

Ensuite, ajoutez un tampon d’élution avec une teneur élevée en imidazole pour déplacer l’histidine des ions nickel et libérer la protéine marquée à la polyhistidine.

Récupérez cet éluat contenant les protéines purifiées.

Centrifuger la suspension de culture bactérienne pendant 20 minutes à 10 000 fois g à quatre degrés Celsius.

Transférez le surnageant de culture dans un bécher en verre de trois litres. Pour concentrer les protéines du surnageant de culture, placez le surnageant de deux litres sur un agitateur magnétique et commencez à agiter vigoureusement. Ajoutez 1 122 grammes de sulfate d’ammonium et laissez le précipité se former en remuant vigoureusement à quatre degrés Celsius sur une période de 4 heures ou pendant la nuit.

Ensuite, centrifugez la solution précipitée de sulfate d’ammonium à 15 000 fois g pendant 20 minutes à quatre degrés Celsius. Décanter le surnageant. À l’aide d’une spatule, récupérez le précipité et transférez-le dans un bécher en verre de 200 millilitres.

Remettez les granulés en suspension dans 35 millilitres de tampon de liaison. Ensuite, transférez chacun environ 25 millilitres de suspension dans un tube de dialyse en cellulose régénérée. Placez la tubulure de dialyse dans 2,5 litres de tampon d’agitation sur un agitateur à quatre degrés Celsius pour dialyser la suspension.

Remplacez la solution de dialyse après deux heures et poursuivez la dialyse pendant la nuit. Ensuite, transférez la suspension dialysée du tube dans les tubes à centrifuger et placez les tubes dans la centrifugeuse à 20 000 fois g pendant 10 minutes à quatre degrés Celsius. À l’aide d’un équipement de filtration par aspiration, versez le surnageant sur un filtre à membrane de 0,2 micromètre pour filtrer.

Transvaser le filtrat dans une fiole de 75 millilitres.

Pour fractionner le gtfSI marqué à la polyhistidine de la suspension filtrée, préparez d’abord une chromatographie d’affinité métallique immobilisée. Après avoir équilibré la résine selon le manuscrit, fermez le robinet de pincement Hoffman.

Ajoutez cinq millilitres de suspension filtrée dans la colonne pour faire une bouillie. Ensuite, transférez toute la boue dans la suspension filtrée restante et faites tourner doucement le mélange pendant 30 minutes à quatre degrés Celsius. Rechargez le mélange dans la colonne.

Ouvrez le robinet de pincement Hoffman pour retirer la suspension par gravité. Laver la résine IMAC avec 20 millilitres de tampon de liaison puis éluer 20 millilitres de tampon d’élution pour obtenir le gtfSI recombinant.

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Dernière mise à jour : 29 août 2026