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Prenez une culture de Lactococcus lactis exprimant la peptidase membranaire NisP.
Mélangez la culture avec un milieu riche en nutriments.
Ajouter l’agar-gélaire fondu, mélanger et verser dans une assiette pour répartir uniformément L. lactis dans l’agar.
Une fois solidifié, enfoncez les puits dans l’agar.
Ensuite, prenez E. coli recombinant produisant des variantes précurseurs de type sauvage ou modifiées du peptide antimicrobien nisine.
Centrifuger pour granuler les bactéries, jeter les surnageants et remettre les granulés en suspension dans le tampon.
Sonicate pour lyser les bactéries, centrifuger et transférer les surnageants dans des tubes frais.
Normalisez les lysats à une densité optique égale à l’aide d’un tampon pour garantir des niveaux de peptides constants.
Pipeter chaque échantillon dans des puits de gélose individuels et incuber les échantillons.
Au cours de l’incubation, les peptides précurseurs de la nisine se diffusent dans la gélose et sont clivés par la NisP, générant ainsi de la nisine mature.
La nisine mature inhibe la croissance de L. lactis , formant des halos clairs autour du puits.
Comparez les tailles de halo pour évaluer l’activité antimicrobienne des variantes de la nisine.
Ajoutez un millilitre de pré-culture de Lactococcus lactis à 25 millilitres de bouillon 2X M17 contenant 10 microgrammes par millilitre de chloramphénicol et deux pour cent de glucose. Ensuite, ajoutez 25 millilitres d’agar-gélor fondu tiède, mélangez et versez la solution dans une grande boîte de Pétri. En maintenant des conditions stériles, séchez la plaque pendant 10 à 15 minutes.
Ensuite, stérilisez les extrémités d’une pipette Pasteur en verre à la flamme. Une fois la pipette refroidie, utilisez son extrémité large pour créer des trous dans la gélose solidifiée. Étiquetez le fond de la boîte de Pétri pour chaque échantillon à côté de la position du trou correspondant.
Pour le dosage de l’activité, prélever les échantillons d’un millilitre des cultures de production d’E. coli et les centrifuger pendant trois minutes à 7 000 fois g. Aspirez le milieu restant et remettez en suspension la pastille cellulaire dans 500 microlitres de tampon de phosphate de sodium par pipetage.
Ensuite, sonifiez l’échantillon sur de la glace en immergeant l’extrémité de la sonde sonicatrice dans la suspension cellulaire. Lancez la sonication. Ensuite, centrifugez le lysat cellulaire pendant 10 minutes à 13 000 fois g pour granuler les débris cellulaires.
Transférez le surnageant dans un nouveau tube de réaction sur de la glace. Diluer et normaliser les surnageants à un millilitre d’une OD600 égale à 0,6, par rapport à la densité cellulaire récoltée, avec un tampon de phosphate de sodium et mélanger. Pour tester l’activité antimicrobienne, ajoutez 40 microlitres de l’échantillon normalisé dans le trou désigné de la gélose indicatrice.
Attendez que tout l’échantillon soit diffusé dans la gélose. Incuber l’assiette toute la nuit à 30 degrés Celsius. Le lendemain, prenez des photos de la plaque de gélose à l’aide d’un scanner à plat ou d’un appareil photo numérique.
La taille du halo d’inhibition de croissance peut être mesurée à la main ou à l’aide d’un logiciel.