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Prenez une culture de Mycobacterium smegmatis hébergeant des gènes inductibles pour la GFP et une luciférase mutante marquée par un signal de sécrétion.
Le gène mutant code pour une luciférase inactive, mais une erreur de traduction naturelle lors de la synthèse des protéines produit une enzyme active.
La GFP sert de contrôle interne pour normaliser l’expression de la luciférase.
Ajouter l’inducteur pour initier l’expression des gènes, puis aliquote la culture dans une plaque multi-puits.
Introduire des concentrations croissantes d’une molécule d’essai dans des puits sélectionnés. Couver.
Dans des conditions de contrôle, une mauvaise traduction entraîne une sécrétion active de luciférase.
Si la molécule testée inhibe les erreurs de traduction, la sécrétion active de luciférase diminue.
Transférez les aliquotes de culture sur une plaque noire et mesurez la fluorescence de la GFP.
Centrifugeuse pour granuler les cellules.
Transférez les surnageants contenant la luciférase sécrétée et ajoutez le substrat, où la luciférase active catalyse son oxydation, produisant de la luminescence.
Mesurer la luminescence et calculer le rapport luciférase/GFP ; Un rapport plus faible indique une réduction des erreurs de traduction dues à la molécule testée.
Pour commencer, inoculez deux millilitres de milieu 7H9 avec la souche rapporteure bactérienne.
Agitez à 37 degrés Celsius pendant un à deux jours ou jusqu’à ce que le DO à 600 nanomètres atteigne la phase stationnaire.
Ensuite, sous-culture dans 50 millilitres de milieu 7H9 et croissance jusqu’à ce que le DO à 600 nanomètres atteigne la phase stationnaire tardive. Avant d’aliquoter les bactéries sur une plaque de 96 puits, ajoutez de l’ATC à une concentration finale de 50 nanogrammes par millilitre et mélangez bien.
Ajoutez 100 microlitres par puits dans une plaque transparente à fond rond de 96 puits. Ensuite, ajoutez différentes doses de Ksg à des puits sélectionnés pour examiner ses effets sur les taux d’erreur de traduction. Ajouter 200 microlitres d’eau stérile sur les bords des puits de la plaque pour limiter l’évaporation des puits d’échantillons.
Scellez la plaque, secouez et induisez les échantillons à 37 degrés Celsius pendant 16 à 20 heures. À l’aide d’une pipette multicanaux, prélever 80 microlitres de chaque puits. Transférez les échantillons sur une plaque à fond noir de 96 puits et mesurez le signal GFP à l’aide du luminomètre.
Après avoir mesuré le signal GFP, centrifugez la plaque à 3 220 fois g pendant 10 minutes. Ensuite, transférez 50 microlitres de surnageant dans une plaque à fond blanc de 96 puits.
Ensuite, ajoutez 50 microlitres de substrat Nluc dans chaque puits, mélangez bien et mesurez la luminescence par le luminomètre. Enfin, déterminez le rapport Nluc/GFP en divisant la valeur de luminescence corrigée de Nluc par la fluorescence GFP.