Synthèse d’antigènes protéiques membranaires stabilisés à l’aide d’un système acellulaire

0 vues4:46 min • September 26th, 2025

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Prenons l’exemple d’un système bactérien exempt de cellules qui n’a pas de structures cellulaires intactes, mais qui conserve les composants moléculaires nécessaires à la transcription et à la traduction in vitro .

Introduire des plasmides codant pour l’antigène de la protéine membranaire et la protéine d’échafaudage, ainsi que des phospholipides et des polymères synthétiques.

Complétez le mélange avec de l’ATP, du GTP et un mélange d’acides aminés pour initier la synthèse des protéines.

Simultanément, préparez une solution alimentaire enrichie avec le mélange d’acides aminés.

Chargez le mélange dans la chambre intérieure et la solution d’alimentation dans la chambre extérieure d’un appareil de dialyse à deux compartiments.

Pendant l’incubation, les substrats diffusent de la chambre externe vers la chambre intérieure à travers la membrane semi-perméable, facilitant la transcription des plasmides et la traduction des protéines.

La protéine d’échafaudage assemble les phospholipides et les polymères en nanodisques lipidiques et facilite le repliement et l’incorporation de l’APM dans ces structures.

Les sous-produits générés au cours de la réaction se diffusent dans la chambre externe, maintenant des conditions optimales pour la formation d’APM stabilisé par nanodisque.

Préparez les MOMP-tNLP en utilisant une méthode acellulaire.

Décongelez le tampon de reconstitution du kit d’expression de protéines acellulaires deux heures avant de définir la réaction et ajoutez un inhibiteur de protéase sans EDTA au tampon. Utilisez un kit conçu pour exécuter cinq réactions d’un millilitre. Pour chaque réaction d’un millilitre, ajoutez 525 microlitres de tampon de reconstitution dans le flacon de lysat E . coli et roulez-le pour le dissoudre.

Ajoutez 250 microlitres de tampon de reconstitution dans le flacon de réaction contenant l’additif et dissolvez-le par roulage. Ensuite, ajoutez 8,1 millilitres de tampon de reconstitution dans le biberon d’alimentation par réaction et roulez-le pour le dissoudre. À une bouteille de mélange d’acides aminés, ajoutez trois millilitres de tampon de reconstitution pour le dissoudre.

À une autre bouteille de méthionine, ajoutez 1,8 millilitres de tampon de reconstitution, dissolvez-le et conservez-le sur de la glace. Ajouter 225 microlitres du mélange reconstitué, 270 microlitres du mélange d’acides aminés reconstitués sans méthionine et 30 microlitres de méthionine reconstituée dans le flacon de lysat d’E. coli . De plus, ajoutez 400 microlitres du mélange DMPC/télodendrimer, 15 microgrammes de plasmide MOMP et 0,6 microgramme de delta-49 ApoA1 au mélange et mélangez-le.

Aliquote 20 microlitres de la solution totale dans un tube de 1,5 millilitre Pour une réaction de contrôle exprimant la GFP. Préparez une solution alimentaire en ajoutant 2,65 millilitres du mélange d’acides aminés reconstitués sans méthionine et 300 microlitres de méthionine reconstituée. Transférez un millilitre de la solution réactionnelle dans la chambre de réaction interne du kit de réaction acellulaire et scellez-le.

Remplissez la chambre extérieure du récipient de réaction avec 10 millilitres de la solution d’alimentation et fermez-la. Ajoutez 0,5 microlitre du plasmide de contrôle GFP aux aliquotes de 20 microlitres du mélange réactionnel. Mettez la réaction dans un agitateur à 300 rotations par minute pendant 18 heures à 30 degrés Celsius.

Surveillez la réaction sous une lumière UV après 15 minutes pour détecter la fluorescence due à la synthèse de la GFP.

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Dernière mise à jour : 22 août 2026