Western Blot pour l’évaluation de l’intégrité structurelle d’un antigène vaccinal bactérien

0 vues2:44 min • October 30th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Prenez un gel SDS-PAGE contenant des bandes protéiques à partir de particules de nanolipoprotéines membranaires. Ces complexes portent la protéine membranaire oligomérique de Chlamydia ou MP, un antigène vaccinal prometteur contre l’infection à Chlamydia.

Utilisez des bandes protéiques de MP oligomères purifiés comme contrôle.

Assemblez le gel, la membrane Western Blot et les composants de transfert dans un système de transfert sec.

Appliquez un courant électrique pour transférer les protéines résolues sur la membrane.

Retirez la membrane et incubez-la dans un tampon contenant des détergents et des anticorps primaires.

Les détergents bloquent les sites d’interaction non spécifiques, tandis que les anticorps primaires ciblent le MP.

Lavez la membrane pour éliminer les anticorps primaires non liés.

Incuber avec des anticorps secondaires conjugués aux fluorophores ciblant les anticorps primaires.

Lavez la membrane pour éliminer l’excès d’anticorps secondaires.

Capturez des images de fluorescence de la membrane.

Des bandes moléculaires correspondant au MP oligomère de contrôle confirment l’intégrité structurelle du MP au sein des complexes, soutenant ainsi son potentiel antigénique.

 

Résoudre les échantillons à l’aide de la méthode SDS-PAGE et transférer les piles de gel à l’aide d’un système commercial de transfert sec pour l’analyse par transfert Western. Retirez les taches de la pile et incubez-les pendant la nuit à quatre degrés Celsius dans un tampon bloquant contenant 0,2 % de TWEEN 20 et 0,5 microgramme par millilitre de MAb40, ou 0,2 microgramme par millilitre d’anticorps MAbHIS antiHIS-tag dirigé contre le HIS-tag de la protéine delta-49ApoA1.

Lavez chaque tache avec du PBST trois fois pendant cinq minutes par lavage. Incuber les transferts pendant une heure dans un tampon bloquant contenant un anticorps secondaire conjugué à un fluorophore dans une dilution de 1 à 10 000. Répétez les lavages avec PBST et capturez l’image à l’aide d’un imageur à fluorescence après le lavage final.

08:52

Évaluation des réponses de l’hôte-pathogène et l’efficacité du vaccin chez la souris

Vidéos connexes

0 Vues

10:58

Production de E. coli-les nanoparticules de protéines auto-assemblantes exprimées pour les vaccins nécessitant une présentation de l'épitope trimmérique

Vidéos connexes

0 Vues

07:40

Identification des voies d'accueil ciblées par les protéines d'effetbactérieur à l'aide d'écrans de toxicité et de suppression de levures

Vidéos connexes

0 Vues

05:42

Utilisation d’un ELISA sandwich pour déterminer la teneur en glycoprotéines immunogènes d’un vaccin

Vidéos connexes

0 Vues

04:51

Mesure des taux d’immunoglobulines G par rapport à un vaccin test dans un sérum de souris

Vidéos connexes

0 Vues

05:41

Génération d’un vaccin multivalent à vésicules de la membrane externe

Vidéos connexes

0 Vues

11:33

Surveillance de l’assemblage d’un facteur de virulence bactérienne sécrété à l’aide d’une réticulation spécifique au site

Vidéos connexes

0 Vues

08:09

L'identification d'un épitope linéaire des cellules B monoclonales d'anticorps reconnus par le peptide à balayage assistée

Vidéos connexes

0 Vues

13:47

Opsono-Adherence Test pour évaluer les anticorps fonctionnels dans le développement de vaccins contre les anthracis Bacillus et autres pathogènes encapsulés

Vidéos connexes

0 Vues

12:53

Production à l’échelle sans cellules et ajout d’adjuvant à une protéine recombinante de la membrane externe majeure de Chlamydia muridarum pour le développement d’un vaccin

Vidéos connexes

0 Vues

Dernière mise à jour : 22 août 2026