JoVE Encyclopedia of Experiments
Microbiologie
0 vues • 4:11 min • November 28th, 2025
Prélève un échantillon environnemental contenant des cellules végétatives et des endospores d’une bactérie formatrice d’endospores, ainsi que d’autres bactéries.
Les endospores possèdent une couche protectrice qui les aide à survivre dans des conditions difficiles.
À l’aide d’une unité de filtration sous vide, filtrez l’échantillon pour piéger les cellules et les endospores sur une membrane.
Placez la membrane dans un plat et coupez-la en petits morceaux.
Transférez les morceaux dans un tube, ajoutez un tampon, puis agitez le tube pour libérer les cellules et les endospores.
Incubez avec agitation à haute température pour affaiblir les structures cellulaires végétatives sans endommager les endospores.
Refroidissez l’échantillon, puis ajoutez la lysozyme et incubez avec agitation. Le lysozyme perturbe la paroi cellulaire des cellules végétatives, provoquant leur rupture.
Ajoutez de l’hydroxyde de sodium et un détergent, puis incubez pour dégrader les macromolécules cellulaires et les débris tout en préservant les endospores résilientes.
Filtrez l’échantillon pour isoler les endospores. Lavez les endospores pour éliminer l’excès de réactifs, en les préparant à une analyse ultérieure.
Une fois l’unité de filtration et la pompe à vide préparées selon le protocole texte, utilisez des pinces stérilisées à l’éthanol pour ajouter une membrane de nitrocellulose stérile à l’unité de filtration. Ajoutez la moitié de l’échantillon surnageant préparé sur l’unité de filtration membranaire et utilisez la pompe à vide pour collecter les cellules de la membrane. Lorsque le liquide est complètement passé à travers le filtre, arrêtez la pompe à vide.
Utilisez des pinces stérilisées pour retirer soigneusement la membrane et la placer dans une boîte de Petri stérile. Avec un nouveau morceau de membrane stérile, répétez la filtration avec la moitié restante de la solution. Pour séparer les endospores des cellules végétatives de la biomasse fraîchement collectée, décongeler la membrane si elle a été congelée, puis utiliser des ciseaux stérilisés à l’éthanol pour la découper en morceaux plus petits.
Transférez les morceaux de membrane dans un tube stérile de deux millilitres et ajoutez 900 microlitres de tampon 1X TE. Mélangez soigneusement en vortex pour libérer la biomasse de la membrane. Incubez le tube à 65 degrés Celsius et 80 tours par minute pendant 10 minutes.
Ensuite, retirez le tube de l’incubateur et laissez-le refroidir pendant 15 minutes. Ajoutez 100 microlitres de lysozyme fraîchement préparée à une concentration finale de deux milligrammes par millilitre et incubez l’échantillon à 37 degrés Celsius et 80 tr/min pendant 60 minutes pour lyser les cellules végétatives. Après la lyse, ajoutez 250 microlitres de 3 solutions normales d’hydroxyde de sodium et 250 microlitres de solution SDS à 6 % à l’échantillon. Incubez à température ambiante et à 80 tours par minute pendant 60 minutes.
Ensuite, préparez une unité de filtration stérile qui maintient des membranes de 25 millimètres de diamètre par autoclavage. Après refroidissement de l’unité de filtration, placez dessus une membrane de nitrocellulose de 25 millimètres de diamètre et 0,2 micromètre.
Ajoutez l’échantillon à la membrane et utilisez la pompe à vide pour filtrer le liquide, capturant les endospores sur la membrane, tandis que le matériau cellulaire végétatif passe.
Cet article décrit un protocole permettant d'isoler des endospores à partir d'échantillons environnementaux contenant des cellules végétatives de bactéries formant des endospores. La méthode implique une filtration, une incubation et un traitement chimique afin de préserver les endospores tout en dégradant les cellules végétatives.
L'isolement de spores endospores à partir d'échantillons environnementaux complexes permet une détection mécanistique des risques lors de la validation de cibles antimicrobiennes, en fournissant un système biologique purifié et résistant. Cette méthode soutient les flux de travail de criblage phénotypique, où les mécanismes de résistance spécifiques aux spores peuvent être évalués sans interférence due à la lyse des cellules végétatives ou aux débris. L'approche renforce la fiabilité prédictive en phase précoce de découverte en garantissant que les phénotypes observés sont attribuables à des caractéristiques propres aux endospores, et non à des artefacts issus de populations mixtes.
Cette méthode d'isolement s'inscrit dans le continuum de découverte allant du test d'hypothèses ciblées à l'identification de composés candidats, en particulier pour les agents antimicrobiens visant des pathogènes formant des spores. Elle place la purification des endospores comme une étape préparatoire à des tests fonctionnels mesurant des paramètres spécifiques aux spores, tels que la résistance à la chaleur, la perméabilité aux colorants ou l'efficacité de la germination.
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Dernière mise à jour : 22 août 2026