JoVE Encyclopedia of Experiments
Microbiologie
0 vues • 3:22 min • January 30th, 2026
Prenez des globules rouges de mouton (SRBC) opsonisés par IgM, avec des anticorps IgM liés aux antigènes de surface cellulaire.
Ajoutez du sérum contenant des protéines complémentaires sauf le C5.
Le complexe C1 se lie aux anticorps et devient actif.
Le C1 activé fende C4 et C2, formant la convertase C3, qui ensuite fende C3 et dépose C3b sur les SRBC.
Sans C5, C3b se dégrade en C3bi.
Ajoutez les SRBC à une culture de macrophages.
C3bi se lie au récepteur des macrophages, déclenchant la phagocytose des SRBC.
Ajoutez une solution hypotonique pour lyser et retirez les SRBC non intériorisées.
Ajoutez un tampon de lyse pour lyser les cellules et libérez l’hémoglobine des SRBC.
Introduisez un réactif de détection.
En présence d’urée, l’hémoglobine catalyse l’oxydation du diaminofluorène par le peroxyde d’hydrogène, produisant un produit coloré.
Mesurez l’absorbance du produit coloré, qui est proportionnelle aux SRBC phagocités.
Ce test modélise la phagocytose des bactéries marquées par anticorps à l’aide de SRBC opsonisées pour imiter des cibles bactériennes.
Pour un test d’opsonisation, incubez 2 fois 10 à la huitième globules rouges de mouton ou SRBC avec 50 microlitres d’immunoglobuline anti-SRBC M ou IgM pendant 30 minutes à température ambiante.
Ensuite, incubez les SRBC opsonisés avec 50 microlitres de sérum humain carent en C5 pendant 30 minutes à 37 degrés Celsius afin de fixer les fragments du complément C3b et inhibiteur C3b sur les SRBC recouverts d’IgM.
Ensuite, aspirez le milieu et ajoutez 100 microlitres de 1 fois 10 aux sept SRBC opsonisés par millilitre de milieu à chaque puits d’une plaque de 96 puits contenant 1 fois 10 à la quatrième macrophages murins cultivés de nuit par puits.
Incubez la coculture de macrophages de souris SRBC pendant 1 heure à 37 degrés Celsius, puis retirez les SRBC non liés en lavant avec 100 microlitres de tampon de lyse chlorure ammonium-potassium pendant 1 minute.
Après le retrait des SRBC non liés, rincez avec 100 microlitres de milieu. Lysez les cellules restantes avec du dodécylsulfate de sodium à 0,1 % et traitez les lysats avec 50 microlitres de 2,7-diaminofluorène complétés avec du peroxyde d’hydrogène à 3 % et 6 molaires d’urée.
Ensuite, mesurez l’absorption de la formation de bleu de fluorène catalysée par l’hémoglobine sur un spectrophotomètre à 620 nanomètres.
Utilisez une courbe standard à 620 nanomètres avec un nombre connu de SRBC pour déterminer le nombre de SRBC opsonisés phagocytisés.
Cet article décrit une méthode d'évaluation de la phagocytose de globules rouges de mouton (GRM) opsonisés par des anticorps par les macrophages. Le test utilise des protéines du complément pour faciliter la liaison des GRM aux macrophages, permettant ainsi de quantifier la phagocytose par détection de l'hémoglobine.
Cet essai fournit une méthode quantitative et reproductible pour modéliser la phagocytose médiée par le complément, permettant une détection mécanistique des risques associés à la phagocytose cellulaire dépendante des anticorps (ADCP) lors de la validation précoce de cibles en immunothérapie. En utilisant des globules rouges de mouton opsonisés comme substituts aux pathogènes marqués par des anticorps, il renforce la fiabilité prédictive dans le criblage de biomédicaments à fragment Fc modifié et d'immunomodulateurs. Le signal basé sur l'hémoglobine offre une sortie scalable, compatible avec les plaques, facilitant la progression du « hit » au « lead » dans les programmes de découverte axés sur l'immunité innée.
Le test s'inscrit dans le continuum de découverte allant de la validation de l'hypothèse ciblée à l'optimisation du composé candidat, en particulier pour les immunomodulateurs ciblant les voies phagocytaires. Il permet une évaluation précoce de l'activité fonctionnelle avant de passer à des modèles d'efficacité plus complexes, comme les co-cultures ou les modèles in vivo.
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Dernière mise à jour : 22 août 2026