Quantification de la charge bactérienne dans le cœur de la souris après l’injection de Listeria monocytogenes dans la veine caudale

0 vues4:21 min • March 31st, 2026

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Prenez une souris attachée et nettoyez sa queue avec de l’alcool pour réduire la contamination au site d’injection et dilater la veine.

Injectez Listeria monocytogenes, une bactérie pathogène, dans la veine de la queue pour la délivrer directement dans la circulation sanguine.

Appliquez une pression douce au point d’injection pour arrêter le saignement, puis laissez la souris récupérer.

Les bactéries injectées circulent systématiquement et atteignent le cœur. Ils colonisent ensuite le cœur, établissant une infection.

Plus tard, prélever le cœur infecté par l’agent pathogène sur la souris euthanasiée.

Homogénéisez le cœur à l’aide d’un homogénéisant pour libérer les bactéries du tissu.

Effectuer des dilutions en série de l’homogénéat dans une plaque multi-puits.

Placez de petits volumes de chaque dilution sur une plaque d’agar et laissez-les sécher.

Incubez la plaque pour permettre aux bactéries de proliférer et de former des colonies visibles.

Comptez les colonies pour déterminer la charge bactérienne dans le cœur de la souris infectée.

Pour inoculer L. Monocytogènes chez les souris, placez un animal dans un harnais afin de le maîtriser pendant l’injection. Utilisez une compresse alcoolisée pour nettoyer le site d’injection et dilater la veine de la queue.

Ensuite, avec une seringue de 1 millilitre et une aiguille de calibre 27,5, injectez doucement la veine caudale de la souris avec 200 microlitres de la culture désirée. Utilisez un essuie-tout pour arrêter tout saignement qui pourrait survenir à cause de l’injection avant de placer l’animal dans une cage propre. Après avoir sacrifié les animaux jusqu’à 72 heures plus tard, selon le protocole texte sous l’armoire de biosécurité, fixez l’animal sur un bloc de dissection et utilisez 70 % d’éthanol pour l’imbiber.

Réalisez une incision en forme de Y sur l’abdomen et le thorax qui s’étend de l’ouverture vaginale jusqu’au processus xiphoïde, progressant jusqu’à l’aisselle de chaque bras. Retirez la peau, retirez les aiguilles des jambes, et utilisez-les pour maintenir la dissection ouverte et couper doucement le péritoine, exposant les intestins, l’estomac, le foie et la rate.

Maintenant, localisez le diaphragme et coupez doucement le long de la cage thoracique afin de visualiser le thorax. Coupez à travers le processus xiphoïde et le sternum jusqu’au cou pour ouvrir le thorax, exposant le cœur et les poumons. À l’aide de pinces, saisissez doucement le cœur par son sommet et soulève-le pour créer une tension dans l’aorte et les vaisseaux pulmonaires. Ensuite, découpez les vaisseaux pour libérer le cœur et placez-le dans un autre tube d’eau.

Après avoir préparé un homogénéisant selon le protocole textuel, homogénéisez un foie pendant au moins deux minutes ou jusqu’à ce qu’il ne reste plus aucune partie visible de l’organe. Utilisez une pince à épiler pour enlever les gros débris de la sonde.

Une fois tous les échantillons d’organes homogénéisés, préparez des dilutions en série de 1 à 10 à 1 à 10 000 pour les échantillons de foie et de rate, et de 1 à 10 à 1 à 1 000 pour le cœur. Placez les dilutions sur des plaques d’agar LB préchauffées. Les échantillons non dilués peuvent être placés sur des plaques séparées pour garantir que les organes ont été suffisamment infectés.

Après avoir séché les assiettes, placez-les dans l’incubateur à 37 degrés Celsius. Utilisez du parafilm pour envelopper les plaques de 96 puits d’échantillons dilués et les placer dans un congélateur à moins 80 degrés Celsius.

Le lendemain, comptez le nombre de colonies et utilisez les dilutions pour calculer le nombre total de bactéries par organe.

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Dernière mise à jour : 22 août 2026