JoVE Encyclopedia of Experiments
Microbiologie
0 vues • 2:35 min • March 31st, 2026
Placez une lame contenant des hémocytes fixes sur la scène du microscope confocal.
Ces hémocytes proviennent de larves de Drosophila melanogaster et ont été infectés par un agent pathogène bactérien.
Les hémocytes sont marqués avec une protéine fluorescente verte, leurs noyaux sont colorés avec un colorant bleu, et les bactéries expriment une protéine fluorescente rouge pour la visualisation.
Configurez le microscope pour détecter les trois fluorophores afin de suivre simultanément les compartiments cellulaires et les agents pathogènes.
En utilisant un objectif haute résolution, concentrez-vous sur l’hémocyte cible pour capturer les détails subcellulaires.
Ajustez la puissance du laser et les gains du détecteur pour obtenir une exposition appropriée de l’échantillon et optimiser la clarté du signal.
Scannez plusieurs plans Z pour vous assurer que le niveau d’exposition est approprié.
Réglez les positions Z en haut et en bas pour imager l’ensemble de l’hémocyte.
Utilisez le zoom de balayage pour isoler l’hémocyte d’intérêt et obtenir une image 3D haute résolution.
Cette méthode permet de visualiser la localisation des agents pathogènes à l’intérieur de l’hémocyte.
Configurez le microscope confocal pour l’imagerie tricolore de DAPI, EGFP et mCherry.
Placez l’échantillon sur le microscope et concentrez l’échantillon à l’aide d’un objectif numérique à ouverture 63X/1,4. Localiser les hémocytes désirés dans le champ de vision pour l’imagerie. Ensuite, ajustez la puissance du laser et les gains du détecteur pour obtenir l’exposition appropriée de l’échantillon.
Vérifiez plusieurs plans Z pour vous assurer que le niveau d’exposition est approprié pour toute l’épaisseur de l’échantillon. Ensuite, trouvez la position supérieure et inférieure sur l’axe Z d’un hémocyte entier. Fixez ces positions comme positions de départ et de fin pour le sectionnement Z.
Utilisez le zoom de balayage pour imager la zone contenant l’hémocyte. Collectez la série d’images à la résolution appropriée, par exemple 1024 par 1024 pixels dans le plan X-Y, et un espacement de 0,3 micromètre dans la dimension Z.
Ce protocole décrit des techniques d'imagerie confocale haute résolution pour l'étude des hématocytes de Drosophila infectés par des agents pathogènes. Il permet aux chercheurs de visualiser les compartiments cellulaires et la localisation des agents pathogènes, ce qui est essentiel pour comprendre les interactions hôte-pathogène.
L'imagerie confocale à haute résolution des hématocytes de Drosophila infectés par des agents pathogènes permet une détection mécanistique des risques en phase précoce de découverte, en visualisant la dynamique des infections intracellulaires et les interactions hôte-pathogène. Cette approche soutient la validation de cibles et le criblage phénotypique en recherche immunologique et sur les maladies infectieuses, en offrant une confiance prédictive pour les tests d'hypothèses thérapeutiques en aval. La méthode améliore la continuité translationnelle entre la phase de découverte et les modèles précliniques en fournissant des données quantitatives et reproductibles au niveau subcellulaire.
La méthode s'intègre dans le continuum de découverte, de la validation de la cible à l'identification de composés d'intérêt, en fournissant des données d'imagerie à haut contenu qui renseignent sur l'activité biologique et le mécanisme d'action.
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Dernière mise à jour : 22 août 2026