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Les mitochondries, les organites cytoplasmiques connus sous le nom de centrales électriques de la cellule, subissent des changements structurels et fonctionnels drastiques au cours de la progression du cancer.
Pour isoler les mitochondries, prenez du tissu cancéreux propre dans un plat en verre et coupez-le en petits morceaux. Transférez les morceaux dans un tube contenant un tampon d’isolement mitochondrial. Homogénéiser l’échantillon pour perturber les cellules et libérer leur contenu, y compris les organites.
Centrifugez le mélange à basse vitesse. Cela granule les composants les plus denses comme les noyaux, les débris tissulaires et toutes les cellules intactes, laissant les composants moins denses comme les mitochondries, les microsomes, les peroxysomes et les lysosomes dans le surnageant. Récupérez le surnageant et centrifugez à grande vitesse. Les microsomes, étant relativement plus légers, restent dans le surnageant, tandis que la fraction brute contenant des mitochondries se granule au fond.
Retirez le surnageant et remettez la pastille en suspension dans un milieu à gradient de densité approprié. Mettez en place un gradient de densité discontinu en superposant la fraction mitochondriale brute dans différents milieux de densité, en les disposant par ordre décroissant de densités de bas en haut. Centrifugeuse à très grande vitesse. Les organites se séparent à l’intérieur du tube pour adopter une position d’équilibre basée sur leurs densités relatives. Recueillir la fraction mitochondriale formée à l’interface entre les milieux de densité, contenant les peroxysomes et les lysosomes.
Pour commencer cette procédure, préparez 250 millilitres de tampon d’isolement mitochondrial comme indiqué dans le protocole texte. Placez environ 1,5 gramme de tissus cancéreux de l’ovaire dans une boîte en verre propre. Ajoutez 2 millilitres de tampon d’isolement mitochondrial pré-refroidi pour laver légèrement le sang de la surface des tissus. Répétez ce lavage trois fois.
Ensuite, utilisez des ciseaux ophtalmiques propres pour hacher complètement le tissu en morceaux d’environ un millimètre cube et transférez les tissus hachés dans un tube à centrifuger de 50 millilitres. Ajouter 13,5 millilitres de tampon d’isolement mitochondrial contenant du nagarse à une concentration de 0,2 milligramme par millilitre. À l’aide d’un homogénéisateur électrique, homogénéisez les mouchoirs hachés pendant deux minutes à 4 degrés Celsius.
Après cela, ajoutez encore 3 millilitres de tampon d’isolement mitochondrial aux homogénats de tissus et mélangez-les bien par pipetage. Centrifuger l’homogénat de tissu préparé à 1 300 x g et à 4 degrés Celsius pendant 10 minutes. Retirez la pastille et conservez le surnageant.
Ensuite, centrifugez le surnageant à 10 000 x g et à 4 degrés Celsius pendant 10 minutes. Retirez le surnageant contenant des microsomes et conservez la pastille. Ajouter 2 millilitres de tampon d’isolement mitochondrial et remettre la pastille en suspension par pipetage léger.
Centrifugez cette suspension de granulés à 7 000 x g et à 4 degrés Celsius pendant 10 minutes. Jetez le surnageant et conservez la pastille, qui contient les mitochondries brutes. Ajouter 12 millilitres de milieu à gradient de densité de 25 % pour remettre en suspension les mitochondries brutes extraites. Faites un gradient de densité discontinu contenant les mitochondries brutes remises en suspension, comme indiqué dans le protocole de texte, et centrifugez-le à 52 000 x g et à 4 degrés Celsius pendant 90 minutes.
À l’aide d’une seringue longue et émoussée, recueillir les mitochondries purifiées à l’interface entre les milieux à gradient de 25 % et 30 % et transférez-les dans un tube propre. Ajoutez un tampon d’isolement mitochondrial aux mitochondries collectées pour les diluer en un volume triple. Centrifugeuse à 15 000 x g et à 4 degrés Celsius pendant 20 minutes. Jetez le surnageant et conservez la pastille. Récupérez la dernière pastille, qui contient les mitochondries purifiées, et conservez-la à moins 20 degrés Celsius.