Extraction de protéines et protéolyse : une méthode pour obtenir des protéines à partir d’échantillons de tissus tumoraux de la prostate et leur digestion enzymatique en peptides

0 vues4:03 min • April 30th, 2023

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Commencez par un échantillon de tissu tumoral de la prostate. Remettez-le en suspension dans un tampon de lyse réfrigéré pour initier la lyse cellulaire. Utilisez un homogénéisateur pour décomposer davantage les structures tissulaires et libérer leurs composants intracellulaires. Sonicez l’échantillon sur de la glace pour assurer une lyse cellulaire complète et cisaillez l’ADN pour éviter les interférences pendant le traitement des peptides. Chauffez le lysat pour perturber la structure tertiaire des protéines et dépliez-le.

Les agents réducteurs contenus dans le tampon clivent les liaisons disulfure entre les résidus de cystéine. Par la suite, les agents alkylants du tampon alkylate free thiol groupes de cystéines réduites pour empêcher la reformation de la liaison disulfure. Les agents dénaturants supplémentaires dans le tampon facilitent la dénaturation contrôlée et le dépliage ultérieur des protéines.

Centrifugeuse pour granuler les débris de tissus et tous les contaminants. Recueillir le surnageant contenant le mélange de protéines dans un tube frais. Ajoutez l’enzyme lysyl endopeptidase pour cliver les liaisons peptidiques dans les protéines à l’extrémité C des résidus de lysine, formant ainsi de gros peptides. De plus, traitez avec l’enzyme trypsine pour cliver les liaisons peptidiques à l’extrémité C des résidus de lysine et d’arginine et générer des peptides plus petits. Transférez le mélange dans une unité de filtration centrifuge.

Centrifugeuse pour permettre aux peptides digérés de pénétrer à travers les pores de la membrane filtrante et de s’accumuler sous forme de flux. Tous les fragments plus gros restent sous forme de rétentat.

Pour prélever du tissu tumoral, pesez la tumeur et, dans un tube à essai de culture, ajoutez 2 millilitres de tampon de lyse glacé pour 100 milligrammes de tissu. Ensuite, utilisez un homogénéisateur à main ou de paillasse pour homogénéiser le lysat.

Pour réduire et alkyler l’échantillon, chauffez le tube à 95 degrés Celsius pendant 5 minutes, puis refroidissez l’échantillon sur de la glace pendant 15 minutes. Pendant qu’il est encore sur la glace, sonicez le lysat trois fois. Ensuite, chauffez l’échantillon à 95 degrés Celsius pendant 5 minutes.

Placez ce tube de sonication dans un rotor à godets oscillants et centrifugez le lysat à 3 500 x g et 15 degrés Celsius pendant 15 minutes. Ensuite, récupérez le surnageant et jetez la pastille. Pour digérer le lysat, utilisez 100 millimolaires de Tris pour diluer l’échantillon 12 fois afin de réduire la quantité de guanidinium. Pour 5 milligrammes de protéines, ajoutez 10 microgrammes de Lysyl Endopeptidase, ou Lys-C, et incubez l’échantillon à température ambiante pendant 5 à 6 heures.

Préparez 1 milligramme par millilitre de trypsine traitée au TPCK dans 1 millimolaire de HCl avec 20 millimolaires de chlorure de calcium et de trypsine ajoutés à un rapport trypsine/protéine de 1 à 100. Incuber l’échantillon à 37 degrés Celsius pendant 3 heures. Ensuite, ajoutez une aliquote supplémentaire de trypsine dans le tube et incubez l’échantillon à 37 degrés Celsius pendant la nuit.

Ajouter l’échantillon dans un filtre de coupure de 15 millilitres et 10 kDa. Centrifuger l’échantillon dans un godet oscillant ou un rotor à angle fixe à 3 500 x g et 15 degrés Celsius jusqu’à ce que le volume de rétentat soit inférieur à 250 microlitres. Ensuite, récupérez le flux et jetez le rétentat.

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Dernière mise à jour : 22 août 2026