La cryoconservation par vitrification : une technique de refroidissement ultra-rapide pour conserver les spécimens biologiques à très basse température en vue d’un stockage à long terme

0 vues4:24 min • April 30th, 2023

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La vitrification, technique de cryoconservation ultra-rapide, permet de refroidir et de stocker des cellules et des tissus vivants à des températures extrêmement basses pendant de très longues durées.

Pour vitrifier un tissu tumoral fraîchement récolté, prenez d’abord le tissu sur une plaque de culture. Excisez toutes les régions nécrotiques, les régions contenant de la graisse ou les caillots sanguins de la tumeur. Lavez le mouchoir pour éliminer toute trace de sang.

Coupez le tissu en tranches d’épaisseur appropriée. Maintenant, transférez les tranches dans un tube contenant une solution de vitrification constituant du DMSO, ou diméthylsulfoxyde, et du saccharose. Ces constituants agissent comme des cryoprotecteurs pour protéger les cellules contre les dommages causés par la congélation.

Incuber à basse température. Le DMSO, un cryoprotecteur qui pénètre dans les cellules, se diffuse à travers la membrane cellulaire et remplace l’eau dans les cellules pour empêcher la formation de cristaux de glace intracellulaires. Parallèlement, le saccharose, un cryoprotecteur non perméant, agit de manière extracellulaire en facilitant la déshydratation cellulaire et en réduisant la formation de cristaux de glace intracellulaires pour atténuer le risque de mort cellulaire.

Placez les tranches tumorales équilibrées sur un support de tissu. Ensuite, transférez cet ensemble dans de l’azote liquide pour qu’il gèle à moins 196 degrés Celsius. Ce refroidissement rapide entraîne la vitrification de l’échantillon qui solidifie le tissu dans un état vitreux et amorphe, tandis que la forte concentration de cryoprotecteurs empêche la formation de cristaux de glace et les dommages cellulaires.

Le tissu vitrifié reste dans un état d’activité métabolique suspendue.

Après avoir euthanasié les souris, utilisez des pinces et des ciseaux stériles pour isoler lentement la tumeur des souris. Lavez les tissus tumoraux dans du DPBS et une boîte de 10 centimètres. Utilisez des pinces et des ciseaux pour disséquer et enlever les zones nécrotiques, les tissus adipeux, les caillots sanguins et le tissu conjonctif.

Ensuite, utilisez un moule pour couper les tissus tumoraux à une épaisseur maximale de 1 millimètre. Lavez les tranches de tumeur avec du DPBS dans un plat de 10 centimètres. Pour commencer le processus de vitrification, utilisez une pince pour transférer les tranches dans le tube V1 et incuber à 4 degrés Celsius pendant 4 minutes. Roulez et retournez brièvement le tube et incubez à 4 degrés Celsius pendant encore 4 minutes.

Ensuite, versez la solution V1 et les tranches dans un plat de 10 centimètres et utilisez une pince pour transférer les tranches dans le tube V2. Incuber à 4 degrés Celsius pendant 4 minutes. Roulez et retournez brièvement le tube et incubez à 4 degrés Celsius pendant encore 4 minutes. Après cela, versez la solution V2 et les tranches dans un plat de 10 centimètres.

Transférez les tranches dans le tube V3 et incubez à 4 degrés Celsius pendant 5 minutes. Roulez et retournez brièvement le tube et incubez à 4 degrés Celsius pendant encore 5 minutes.

Assurez-vous que toutes les tranches coulent au fond du tube. Si plusieurs tranches restent flottantes, roulez et retournez brièvement le tube et incubez à 4 degrés Celsius jusqu’à ce que toutes les tranches coulent complètement. Ensuite, versez la solution V3 et les tranches dans un plat de 10 centimètres. Coupez les porte-mouchoirs à la bonne longueur et placez-les sur de la gaze stérile. Transférez les tranches sur les supports. Enveloppez les supports avec de la gaze.

À l’aide d’une pince, placez les supports dans de l’azote liquide et laissez-les incuber pendant 5 minutes. Après cela, étiquetez les flacons cryogéniques avec les informations sur les tissus. Transférez les supports contenant des tranches de tissu dans les flacons, qui seront stockés dans de l’azote liquide.

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Dernière mise à jour : 22 août 2026