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La microscopie multiphotonique permet de capturer des images tridimensionnelles à haute résolution du système vasculaire marqué par fluorescence dans le tissu vivant. Commencez avec une souris anesthésiée en position couchée.
Injectez avec précaution une suspension de fluorophore conjugué-dextran dans sa veine de queue. Les molécules injectées circulent dans la circulation et atteignent des organes comme le foie. Le colorant fluorescent marque le sérum vasculaire, facilitant la visualisation des vaisseaux sanguins, tandis que le dextran de haut poids moléculaire attaché empêche leur fuite du système vasculaire.
Préparez la région abdominale de la souris. Transférez-le sur la base du cadre d’imagerie d’organe équipé d’un anneau d’aspiration contenant une lentille d’imagerie relié à une pompe à vide. Inciser le long de son bord sternal inférieur pour exposer le foie.
En guidant l’anneau d’aspiration vers le foie, appliquez un vide ou une pression négative qui facilite l’adsorption du foie sur le cristallin dans l’anneau d’aspiration. Cette étape réduit les artefacts de mouvement pendant l’imagerie. Transférez le cadre d’imagerie contenant la souris sur la platine du microscope à balayage laser multiphotonique.
Couvrez l’objectif avec une solution saline qui agit comme un moyen d’immersion pour l’imagerie haute résolution. Au cours de l’imagerie, les photons focalisés de longue longueur d’onde et de faible énergie permettent une pénétration plus profonde des tissus et excitent les fluorophores dans les vaisseaux sanguins au point focal, provoquant l’émission et la détection de signaux fluorescents.
Une série de scans à partir des coupes optiques sélectionnées à différentes profondeurs recrée une image tridimensionnelle complète des vaisseaux sanguins dans le tissu.
Après avoir confirmé l’absence de réflexe de redressement chez une souris mâle C57BL/6 âgée de 8 semaines anesthésiée, essuyez la queue de la souris avec de l’alcool à 75 % et utilisez une seringue de 1 microlitre munie d’une aiguille de calibre 30 pour injecter 10 milligrammes par millilitre d’isothiocyanate-dextran de rhodamine B fraîchement préparé dans 100 microlitres d’isothiocyanate-dextran de rhodamine B dans la veine caudale de la queue.
Lorsque toute la solution a été distribuée, utilisez un coton-tige pour appliquer une pression sur le site de ponction et utilisez de la gaze humide avec de l’eau stérile pour tremper la fourrure abdominale. Utilisez un rasoir pour raser l’abdomen, en faisant des mouvements dans le sens de la fourrure, et placez la souris sur un coussin chauffant désinfecté à 37 degrés Celsius, désinfecté par de l’alcool.
Pour fixer le foie de la souris avec un cadre d’imagerie d’organe corporel, placez d’abord une ventouse propre de 5 millimètres de diamètre dans une position fixe et essuyez le coussin chauffant et la ventouse avec de l’alcool à 75 %. Connectez la ventouse au tuyau de la pompe à vide et allumez la pompe.
Sur une table stérilisée à l’alcool à 75 %, utilisez des ciseaux chirurgicaux pour couper 2 centimètres de peau du bord sternal inférieur de la souris et exposer le foie. Placez la souris et le coussin chauffant sur la base du support du cadre corporel et ajustez le dispositif d’imagerie d’organe de sorte que la ventouse puisse retenir le foie. Ensuite, utilisez une pression négative de 30 à 35 kilopascals pour l’aspiration afin que le foie se fixe à la coupe.
Pour configurer le microscope à balayage laser multiphotonique, allumez le microscope et sélectionnez l’objectif 60x. Fixez le cadre et la souris sous l’objectif et ajoutez une goutte de solution saline normale dans la tasse assez grande pour couvrir l’objectif. Ajustez l’objectif de manière à ce que la lentille touche juste la solution saline normale et allumez le logiciel laser.