Isolement des cellules endothéliales de l’aorte porcine (pAEC) : une méthode enzymatique pour isoler les cellules endothéliales de l’aorte abdominale porcine prélevée

0 vues4:50 min • July 8th, 2025

L’aorte - l’artère principale transportant le sang oxygéné du cœur vers le corps - est composée de trois couches ou « tuniques » : une intima interne, une médiane moyenne et une acécutive externe. Les cellules endothéliales ou EC sont présentes dans l’intima sous la forme d’une monocouche mince et continue sur une membrane basale de soutien composée de protéines structurales, principalement du collagène.

Pour isoler les CE, commencez par une aorte porcine récoltée dans une boîte de culture. Exciser ses extrémités et tout tissu adhérent environnant pour éviter la contamination des cellules non endothéliales. Lavez l’aorte avec un tampon contenant des antibiotiques pour inhiber la croissance microbienne.

Passez une suture chirurgicale stérile dans l’aorte et attachez l’une de ses extrémités, en maintenant la suture dans la lumière. Fixez l’extrémité attachée et rétractez la suture pour inverser complètement l’aorte. Cela expose l’intima contenant des CE à la digestion enzymatique. Traitez l’aorte avec une solution de collagénase préchauffée et peu concentrée pour une activité enzymatique optimale et incubez.

La collagénase décompose les protéines de collagène présentes dans la membrane basale sous-jacente aux CE, initiant leur dissociation. Après l’incubation, ajoutez un tampon réfrigéré pour inactiver les enzymes collagénase.

Grattez doucement la surface intimale de l’aorte et rincez-la avec un tampon pour libérer les CE dans la solution. Centrifugez cette solution pour granuler les EC. Remettez le granulé en suspension dans un milieu approprié. Ensemencez la suspension cellulaire dans un ballon de culture et incubez. Les CE adhèrent au fond du ballon et prolifèrent.

Pour l’isolement des cellules endothéliales de l’aorte aortique porcine, transférez l’aorte de porc dans une boîte de Pétri de 150 millimètres dans des conditions aseptiques et retirez délicatement les deux extrémités du vaisseau. Coupez tout excès de tissu supplémentaire à l’endroit où le vaisseau a été serré, à l’aide d’une pince et de ciseaux stériles, et utilisez 20 à 50 millilitres de tampon de lavage frais pour rincer l’extérieur et l’intérieur de l’aorte.

Ensuite, passez une suture chirurgicale à travers l’aorte et attachez sans serrer une extrémité du vaisseau, en maintenant la suture dans la lumière. Fixez doucement l’aorte près de l’extrémité attachée à l’aide d’une pince, puis tirez lentement sur les sutures chirurgicales pour inverser l’aorte jusqu’à ce que la surface endothéliale de l’aorte soit exposée.

Lavez la surface endothéliale de l’aorte trois fois avec 10 millilitres de tampon de lavage frais par lavage et placez l’aorte dans un tube à centrifuger de 15 millilitres. Couvrez l’échantillon avec 10 millilitres de solution digestive IV de collagénase IV à 0,005 % réchauffée à 37 degrés Celsius et incubez le tissu à 37 degrés Celsius pendant 15 minutes.

À la fin de l’incubation, transférez tout le contenu du tube dans une boîte de culture de 100 millimètres et arrêtez la digestion avec 10 à 15 millilitres de tampon d’arrêt pré-refroidi. À l’aide d’un grattoir cellulaire, retirez délicatement les cellules endothéliales aortiques de la surface intérieure du vaisseau et lavez le vaisseau trois fois avec 5 millilitres de tampon de lavage par lavage.

Après le dernier lavage, transférez le surnageant dans un tube à centrifuger de 50 millilitres et lavez le fond du plat de culture deux fois avec 5 millilitres de tampon de lavage frais par lavage, en regroupant les lavages dans le tube de 50 millimètres.

Recueillir les cellules par centrifugation et jeter tous les millilitres de surnageant, sauf les 10 derniers millilitres. Ajoutez 20 millilitres de tampon de lavage pour remettre les granulés en suspension en prenant soin d’éviter les bulles, et récupérez les cellules avec une autre centrifugation.

Remettez la pastille en suspension dans 1 millilitre de milieu de culture cellulaire pour le comptage, et plaquez les cellules à une concentration de 1 x 10 à 6 cellules par 25 centimètres carrés de flacon. Ensuite, placez les cellules dans l’incubateur de culture cellulaire à 37 degrés Celsius et 5 % de dioxyde de carbone, en rafraîchissant le milieu tous les 2 à 3 jours.

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Dernière mise à jour : 22 août 2026