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Pour effectuer la transfection, prenez une chambre spécialisée contenant des œufs de souris fraîchement fécondés en suspension dans une goutte de milieu approprié. À ce stade, l’ovule contient un grand ovocyte central contenant les pronoyaux paternel et maternel.
L’ovocyte est recouvert d’une zone pellucide riche en glycoprotéines, entourée d’amas étroitement disposés de cellules cumulus intégrées dans la matrice extracellulaire riche en acide hyaluronique. Maintenant, traitez les ovules avec l’enzyme hyaluronidase, qui digère l’acide hyaluronique. Cela dissocie les cellules du cumulus, exposant finalement la zone pellucide entourant l’ovocyte.
Placez un seul ovocyte traité près de l’extrémité d’une pipette de retenue et appliquez une pression d’aspiration pour limiter sa position. Prenez une aiguille de micro-injection à calibre étroit contenant une suspension de vecteur lentiviral modifiée transportant un transgène encapsulé dans l’enveloppe virale. Ces rétrovirus ont la capacité inhérente de s’intégrer dans le génome de l’hôte.
Ensuite, percez l’aiguille à travers la zone pellucide pour atteindre l’espace périvitellin - un espace entre la zone pellucide la plus externe et la membrane plasmique la plus interne. Introduire la suspension du vecteur lentiviral dans l’espace périvitellin et incuber pour faciliter la transduction - un processus de transfert génétique médié par le virus.
Le vecteur viral fusionne avec la membrane de l’ovocyte, ce qui permet la libération de l’ARN transgénique dans le cytoplasme des ovocytes, qui se transcrit inversement en ADN double brin. Finalement, l’ADN s’intègre à des loci spécifiques dans le génome de l’hôte, ce qui entraîne l’expression du transgène.
En préparation, centrifugez la suspension de vecteur lentiviral préparée à 160 g pendant 2 minutes pour granuler les débris souvent présents dans le stock de lentivirus congelé. Dans une enceinte de sécurité de classe II, transférez le surnageant dans un nouveau tube de 0,5 millilitre. Ensuite, chargez 1 microlitre de surnageant dans une pipette d’injection, puis fixez la pipette d’injection au micromanipulateur du côté droit et fixez la pipette de maintien au micromanipulateur du côté gauche.
Maintenant, distribuez 8 microlitres de milieu M2 au centre de la lame de dépression et couvrez d’huile de paraffine légère pour éviter l’évaporation. Ensuite, placez 20 œufs dans les endroits peu profonds de la goutte sans créer de bulles. Ensuite, assurez-vous que l’extrémité de la pipette d’injection est ouverte. Si ce n’est pas le cas, tapotez la pipette d’injection avec la pipette de maintien pour l’ouvrir, puis réglez l’injecteur pour des injections de 20 secondes.
Maintenant, à l’aide de la pipette de maintien et de la pression manuelle, aspirez un œuf fécondé qui contient deux pronoyaux et deux globules polaires. Ensuite, à l’aide de la pipette d’injection, injectez l’espace périvitellin de l’ovule.
Ne touchez pas la membrane plasmique. Ajustez la pression de manière à ce que l’espace périvitellin soit rempli de solution. La pression ne doit pas dépasser 600 hectopascals. Immédiatement après l’injection des 20 ovules, transférez le lot dans un bain de milieu M16 préchauffé et incubez-les pendant au moins 30 minutes avant de les implanter.