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Commencez par l’ADN plasmidique codant pour des protéines fluorescentes ou la suspension d’ADNp dans un milieu. Ajoutez des nanoparticules magnétiques biocompatibles, recouvertes de polymères cationiques, à la suspension d’ADNp et incuberez.
Les polymères cationiques chargés positivement interagissent et se conjuguent électrostatiquement avec l’ADNp chargé négativement, ce qui entraîne la condensation de l’ADNp et la formation de « polyplexes magnétiques » avec une charge positive globale.
Maintenant, transférez le mélange polyplex dans une plaque multi-puits contenant une culture de cellules neuronales de souris primaires adhérentes. Montez la plaque multipuits sur une plaque magnétique et incuberez.
Le champ magnétique généré par la plaque magnétique provoque la sédimentation et l’accumulation des polyplexes à la surface des cellules neuronales. Ce contact étroit avec la surface cellulaire facilite la liaison non spécifique des polyplexes chargés positivement aux protéoglycanes associés à la membrane cellulaire chargés négativement.
Par la suite, les polyplexes sont internalisés par endocytose - un processus dans lequel les régions locales de la membrane cellulaire s’invaginent et se pincent pour former des vésicules liées à la membrane appelées endosomes.
À l’intérieur du cytoplasme, les polymères cationiques du polyplexe induisent l’accumulation de protons dans l’endosome. L’afflux simultané d’ions chlorure pour maintenir la neutralité de charge augmente la force ionique endosomale, entraînant un afflux d’eau.
Finalement, les endosomes gonflent et se rompent en raison de la pression osmotique, libérant des polyplexes dans le cytoplasme. L’ADNp condensé dans les polyplexes facilite l’augmentation de la motilité cytosolique, tandis que les polymères cationiques protègent l’ADNp de la dégradation des nucléases cytoplasmiques.
Après la dissociation des polyplexes, l’ADNp libéré - pendant la phase appropriée du cycle cellulaire lorsque la membrane nucléaire se désassemble temporairement - est transféré vers le noyau. Les cellules transfectées avec succès avec de l’ADNp expriment des protéines fluorescentes.
Pour cultiver des motoneurones, diluez-les à 5 000 à 10 000 cellules dans 500 microlitres de milieu de culture par puits dans une plaque de 24 puits. Ensuite, prélevez la solution stratifiée à l’aide d’une pointe de pipette P1000. Transférez immédiatement les motoneurones dilués dans le milieu de culture sur les plaques d’enrobage pour éviter le dessèchement.
Pour préparer l’ADN, mettez en suspension 1 microgramme d’ADN dans 50 microlitres de milieu de culture neuronal, et agitez pendant 5 secondes. Pour préparer le tube à billes, mettez en suspension 1,5 microlitres de billes dans 50 microlitres de milieu de culture neuronale. Ajoutez 50 microlitres de solution de billes à 50 microlitres de solution d’ADN et incubez pendant 20 minutes à température ambiante.
Lors de cette incubation, prélevez 100 microlitres de milieu de culture du puits qui sera transfecté. Par la suite, transférez 100 microlitres du mélange de billes d’ADN dans chaque puits et incubez la plaque de 24 puits 20 à 30 minutes sur la plaque magnétique à 37 degrés Celsius.