Coloration négative par capsule d’échantillons de virus sur des grilles TEM : une technique de coloration des métaux lourds pour visualiser l’ultrastructure des virus enveloppés

0 vues3:50 min • July 8th, 2025

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Pour une coloration négative des virus enveloppés, commencez par la suspension virale souhaitée. Incuber les virus avec du glutaraldéhyde, un fixateur chimique. Lors de la pénétration, le glutaraldéhyde réticule les protéines virales et les acides nucléiques, inactivant les virus tout en préservant la morphologie, facilitant ainsi la manipulation sûre des virus. Transférez ce mélange dans une assiette multi-puits.

Fixez des grilles de microscopie électronique à transmission, MET, contenant la capsule à une pipette via un coupleur. À l’aide de la pipette, aspirez le mélange virus-fixateur dans la capsule. Incuber l’ensemble de pipette pour que les virus s’adsorbent sur les surfaces de la grille.

Retirez le mélange. Lavez la capsule en éliminant les virus non adhérents et les fixateurs. Pipetez une solution d’acétate d’uranyle, un colorant à base de métaux lourds, dans la capsule. Incuber pour permettre au colorant d’entrer en contact avec les virus.

Les ions uranyle se lient à des glycoprotéines membranaires et à des phospholipides spécifiques sur les surfaces virales. Les ions peuvent pénétrer dans les virus et se lier aux protéines de la nucléocapside qui entourent le génome. Cette liaison induit l’agrégation et le dépôt d’ions de métaux lourds autour du virus et de structures virales spécifiques.

Séparez la capsule. Enlevez l’excès de tache sur les grilles et laissez sécher à l’air.

Pendant l’imagerie TEM, des faisceaux d’électrons de haute énergie traversent le virus, ce qui fait que les régions colorées à forte densité d’électrons du virus dispersent davantage d’électrons. Cependant, la faible densité électronique globale du virus permet aux électrons de traverser. Le système d’imagerie traite ces électrons dispersés différemment, produisant une image à contraste élevé.

Les virus colorés négativement apparaissent plus clairs avec une nucléocapside foncée contre une bordure sombre, ce qui facilite la visualisation de l’ultrastructure.

Pour commencer, mélangez la suspension virale avec un volume égal de glutaraldéhyde à 4 % pour obtenir une concentration finale de 2 % de glutaraldéhyde. À l’aide d’un fixateur, inactivez le virus pendant au moins 24 heures. Décontaminez le tube et transférez-le dans l’installation BSL2-EM.

Après cela, fixez une capture chargée par grille à une pipette. Aspirez le mélange dans la capsule. Placez la pipette sur le côté avec les grilles orientées horizontalement pendant 10 minutes.

Ensuite, prenez la pipette et expulsez le mélange de virus dans un conteneur à déchets. Aspirez 40 microlitres d’eau déminéralisée dans la capsule, puis jetez l’eau dans un récipient à déchets. Répétez ce lavage trois fois.

Après cela, aspirez 40 microlitres de 1 % d’UA ou de 1 % de PTA dans la capsule pendant 30 secondes. Retirez la capsule de la pipette. À l’aide de papier filtre, séchez les grilles au tlot, puis laissez-les sécher à l’air.

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Dernière mise à jour : 1 août 2026