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Au cours de l’ischémie cérébrale, une altération du flux sanguin vers le cerveau réduit l’apport d’oxygène et de nutriments aux tissus, causant des lésions cérébrales. Après une brève ischémie, à mesure que le flux sanguin vers le cerveau est rétabli, la reperfusion avec un apport accru en oxygène entraîne une surproduction d’espèces ioniques réactives, entraînant des lésions tissulaires oxydatives, connues sous le nom de lésions d’ischémie-reperfusion.
Pour évaluer les lésions cérébrales à la suite d’une lésion d’ischémie-reperfusion dans un modèle de rat, il faut d’abord prélever le cerveau du rat. Rincer dans un tampon réfrigéré pour enlever les débris et le sang. Sectionnez le cerveau pour obtenir des tranches coronales de l’épaisseur souhaitée. Transférez soigneusement les tranches dans un plateau contenant un tampon - avec les surfaces antérieures vers le haut - pour une coloration ultérieure.
Ajouter une solution de chlorure de triphényltétrazolium chaud, TTC, un colorant redox soluble dans l’eau, sur les tranches de cerveau. Incuber dans des conditions sombres, car le TTC est sensible à la lumière. Le TTC pénètre dans les cellules à l’intérieur de la section tissulaire.
Dans les cellules vivantes, l’enzyme succinate déshydrogénase mitochondriale active en présence de cofacteurs réduit la TTC, incolore lorsqu’elle est oxydée, en formazan rouge insoluble dans l’eau, colorant les cellules viables en rouge foncé. Cependant, les cellules nécrotiques manquent d’activité déshydrogénase ; ainsi, le TTC reste sous forme oxydée, colorant les cellules en blanc.
Après l’incubation, transférez les tranches de cerveau dans un plateau d’imagerie. Séparez les hémisphères dans le plan sagittal. Imaginez les tranches de cerveau.
Les tissus sains apparaissent rouges, tandis que les tissus endommagés apparaissent blancs, ce qui différencie le tissu nécrotique du tissu viable et permet d’estimer l’étendue des lésions tissulaires.
Après avoir retiré le cerveau, y compris le tronc cérébral, du crâne, placez le cerveau, avec sa face ventrale vers le haut, dans la matrice cérébrale. En fonction du poids des animaux, choisissez la bonne taille de la matrice de cerveau en acier inoxydable. À l’aide de lames, limitez les parties frontales et caudales du cerveau. Ensuite, placez les lames partiellement dans les canaux entre la première et la dernière lame.
Lorsque toutes les lames sont insérées et disposées en parallèle, appuyez sur toutes les lames avec la paume en même temps pour couper le cerveau en tranches coronales de 2 millimètres. Ensuite, saisissez fermement les lames sur les côtés avec deux doigts et retirez-les avec le cerveau tranché de la matrice. Disposez les tranches de cerveau une par une dans un plateau, en vous assurant que la surface antérieure de chaque tranche est toujours tournée vers le haut.
Ensuite, versez une solution chaude de chlorure de triphényltétrazolium à 1 % et du PBS sur les tranches de cerveau et incubez pendant 8 minutes à 37 degrés Celsius dans l’obscurité. Après l’incubation, transférez les tranches de cerveau dans un plateau en plastique bleu pour capturer des images. Disposez les tranches de cerveau dans un ordre séquentiel de la partie frontale à la partie caudale et utilisez un scalpel pour séparer les hémisphères dans le plan sagittal.