Méthode de double coloration : une technique pour visualiser les interactions plantes-champignons à l’aide de rouge de ruthénium et de bleu de coton lactophénol

0 vues3:03 min • July 8th, 2025

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Dans la rouille du café, les spores d’Hemileia vastatrix - un champignon pathogène - atterrissent à la surface de la plante et développent un tube de germination, initiant ainsi une infection via les hyphes.

Ces hyphes se propagent à l’intérieur des tissus et envahissent les cellules végétales via des structures spécialisées en forme de doigts appelées haustoria, qui absorbent les nutriments de la plante. Les haustoria sécrètent également des molécules effectrices qui sont reconnues par les protéines de résistance de la plante, ce qui conduit à une encapsulation riche en pectine de l’haustoria pour limiter l’infection.

Pour visualiser cette interaction, commencez par une section de feuille de caféier ultrafine, incrustée de résine et infectée. Maintenant, traitez l’échantillon avec du bleu de coton lactophénol - une coloration histologique comprenant du phénol, de l’acide lactique, du glycérol et du bleu de coton. Chauffez brièvement la diapositive.

Lorsque les composants du colorant pénètrent dans les tissus, le phénol élimine tous les organismes vivants, tandis que l’acide lactique et le glycérol aident à préserver l’architecture cellulaire. Simultanément, les molécules de bleu de coton se lient aux fractions de chitine dans la paroi cellulaire fongique et la colorent en bleu.

Lavez l’échantillon à l’eau distillée. Ensuite, traitez l’échantillon avec un colorant rouge de ruthénium.

Les molécules de ruthénium chargées positivement se lient aux polysaccharides chargés négativement dans la paroi cellulaire végétale riche en pectine et la colorent en rouge. Encore une fois, lavez la lame et visualisez-la au microscope.

La paroi cellulaire végétale riche en pectine apparaît rouge, encapsulant l’haustoria bleu qui s’étend à partir des hyphes fongiques bleus.

Coupez le bloc en sections de 5 micromètres d’épaisseur à l’aide d’un microtome rotatif équipé de lames en acier de 8 centimètres. Placez les sections sur des lames de verre recouvertes d’eau distillée, puis transférez les lames sur une plaque chauffante pour qu’elles sèchent à 40 degrés Celsius et favorisez l’adhérence des sections sur les lames de verre.

Après séchage, étiquetez les lames de verre avec le nom de référence du bloc et le numéro de la lame. Couvrez les sections avec 2 millilitres de 5 % de bleu de coton au lactophénol et chauffez-les sur une plaque chauffante à 45 degrés Celsius pendant cinq minutes.

Retirez l’excès de colorant en lavant la lame trois fois dans un bécher rempli d’eau distillée. Teintez-le avec 2 millilitres de rouge de ruthénium à 0,01 % dans l’eau pendant une minute.

Retirez l’excès de colorant en lavant la lame trois fois dans un bécher rempli d’eau distillée. Mettez une goutte d’eau distillée sur les sections et recouvrez les sections avec une lamelle pour effectuer une analyse par microscopie optique.

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Dernière mise à jour : 15 août 2026