Chromatographie d’interaction hydrophobe dépendante du calcium : une technique de purification des protéines de liaison au calcium basée sur des interactions hydrophobes

0 vues3:22 min • July 8th, 2025

La chromatographie d’interaction hydrophobe dépendante du calcium est une technique permettant de séparer les protéines de liaison au calcium des autres protéines non liantes au calcium dans un échantillon.

Pour commencer, prenez une colonne de chromatographie pré-assemblée contenant une matrice de billes d’agarose réticulées dérivées de groupes phényles hydrophobes pour faciliter les interactions avec les protéines cibles. Equilibrez-le avec un tampon de liaison contenant une très forte concentration d’ions calcium pour une interaction maximale entre la résine et la protéine cible lors du chargement ultérieur de l’échantillon.

Prélever un échantillon contenant le mélange de protéines dialysées et le compléter avec une concentration égale de chlorure de calcium comme utilisé dans le tampon de liaison pour l’équilibrage de la colonne. Cela maximise la liaison des protéines à la colonne.

Les ions calcium se lient à des protéines spécifiques du lysat, induisant un changement de conformation dans ces molécules de protéines exposant leurs régions hydrophobes.

Filtrez le mélange pour séparer les impuretés et les agrégats afin d’éviter qu’ils n’obstruent la colonne. Chargez ce filtrat dans la colonne pré-équilibrée. Les protéines dont les régions hydrophobes sont exposées interagissent avec les groupes phényles hydrophobes correspondants de la résine.

Laver à l’aide du tampon de liaison contenant du sel pour éliminer les protéines non liées afin d’améliorer la pureté de l’échantillon dans les étapes ultérieures. Passez le tampon d’élution sans chlorure de calcium contenant de l’EDTA - un chélateur divalent - à travers la colonne.

Lorsque l’EDTA chélate les ions calcium, les interactions hydrophobes entre la protéine cible et la résine sont perturbées. Les protéines cibles deviennent mobiles et éluées de la colonne.

Pour poursuivre la purification des protéines, après la dialyse des protéines, ajoutez du chlorure de calcium à l’échantillon jusqu’à une concentration finale de 25 millimolaires, ce qui facilitera la liaison de l’S100A12 à la résine à l’étape suivante. Ensuite, filtrez l’échantillon à travers un filtre d’une taille de coulée de 0,45 micron.

Équilibrez les tampons HIC et les échantillons à 4 degrés Celsius. Ensuite, connectez les tampons de colonne HIC-A et B et la colonne au système et ajustez les paramètres.

Démarrez la méthode pour équilibrer la colonne avec 1 à 2 volumes de colonne de tampon HIC-A, et chargez l’échantillon, ainsi que le « bloc d’échantillon wash unbound » lorsque le signal UV atteint à nouveau le niveau de base.

Ensuite, commencez l’élution avec un tampon contenant un chélateur de calcium, l’EDTA. Recueillir 2 millilitres de fractions de pic pendant l’élution.

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Dernière mise à jour : 29 août 2026