Essai de protection enzymatique à base de lysostaphine : une méthode in vitro pour quantifier la charge intracellulaire de Staphylococcus aureus par destruction sélective de bactéries extracellulaires à médiation enzymatique

0 vues4:04 min • July 8th, 2025

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Commencer avec une monocouche de cellules épithéliales dans un milieu de culture approprié. Ces cellules expriment des intégrines - des récepteurs de surface couvrant la membrane. Le milieu de culture contient de la fibronectine sécrétée par les cellules épithéliales - une glycoprotéine.

Ajouter une suspension de Staphylococcus aureus - une bactérie pathogène à Gram positif - dans la plaque de culture. Ces bactéries contiennent des protéines de liaison à la fibronectine, ou FnBP, ancrées dans leur paroi cellulaire.

Incuber la plaque pour initier l’infection bactérienne, dans laquelle la fibronectine se lie à la FnBP de la bactérie et aux intégrines sur les cellules hôtes épithéliales. Cette interaction tripartite FnBP-fibronectine-intégrine médie l’internalisation bactérienne chez l’hôte.

Traitez les cellules avec de la lysostaphine - une enzyme endopeptidase - et incuber. La lysostaphine pénètre sélectivement dans les parois cellulaires des bactéries extracellulaires. Il clive les ponts pentaglycines dans les peptidoglycanes, les lysant ainsi tandis que les bactéries intracellulaires restent protégées de la lysostaphine.

Complétez la culture avec une enzyme protéolytique pour désactiver la lysostaphine restante, l’empêchant ainsi de tuer les bactéries intracellulaires dans les étapes.

Ajoutez un tampon de lyse à la culture, ce qui rompt les cellules épithéliales de l’hôte et libère des bactéries intracellulaires dans le lysat cellulaire. Ensuite, placez le lysat cellulaire contenant des bactéries sur une plaque de culture appropriée et incuberez.

Les bactéries se développent et se multiplient pour former des colonies bactériennes, qui peuvent être analysées pour estimer l’étendue de l’internalisation bactérienne dans les cellules hôtes.

Avant l’inoculation cellulaire, observez chaque puits de la plaque à 24 puits par microscopie à faible grossissement pour vous assurer que les cellules sont saines et se développent comme prévu. Ensuite, retirez et jetez le milieu de culture cellulaire épuisé de la plaque à 24 puits et ajoutez 500 microlitres de suspension bactérienne dans chaque puits contenant 100 % de cellules confluentes. Incuber les cellules pendant 2 heures à 36 degrés Celsius et 5 % de dioxyde de carbone.

Pour quantifier les bactéries intracellulaires à l’aide du test de protection enzymatique amélioré, préparer un tampon de lyse 4X, un Triton X-100 à 2 %, de la trypsine-EDTA et des solutions de travail et de lysostaphine comme mentionné dans le manuscrit du texte.

Ensuite, préparez 6,25 millilitres de milieu d’infection complet complété par de la lysostaphine, en ajoutant 6 millilitres de milieu d’infection complet à 250 microlitres de la solution de travail de lysostaphine. Ensuite, ajoutez 250 microlitres du milieu d’infection complet complété par de la lysostaphine dans chaque puits et agitez doucement la plaque en la faisant pivoter à la main.

Pour permettre à la lysostaphine de tuer les bactéries extracellulaires, incubez les cellules pendant 1 heure à 36 degrés Celsius et 5 % de dioxyde de carbone. Ensuite, inactivez la lysostaphine en ajoutant 10 microlitres de protéinase K à 20 microgrammes par millilitre dans chaque puits et en incubant les cellules pendant 2 minutes à température ambiante.

Ensuite, ajoutez 250 microlitres de tampon de lyse 4X pour lyser les cellules par choc osmotique, et incubez les cellules pendant 10 minutes à 36 degrés Celsius. Après l’incubation, pipetez le lysat cellulaire de haut en bas plusieurs fois, pour vous assurer que les cellules sont complètement lysées et homogénéisées.

Ensuite, à l’aide d’un plateau spiralé automatique, déterminez la charge de Staphylococcus aureus de chaque puits et incubez les plaques de gélose pendant 18 à 24 heures à 36 degrés Celsius. Le lendemain, comptez le nombre de colonies avec un compteur de colonies pour calculer la charge intracellulaire de Staphylococcus aureus de chaque puits.

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Dernière mise à jour : 15 août 2026