Essai biologique sur cellules Caco-2 : une méthode in vitro pour mesurer la biodisponibilité du fer dans des sources alimentaires complexes

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Les entérocytes sont des cellules spécialisées de l’intestin grêle qui jouent un rôle crucial dans l’absorption des nutriments, y compris l’absorption du fer.

Pour évaluer la biodisponibilité du fer - la proportion de fer ingéré accessible aux fonctions physiologiques - prélever une solution acidifiée contenant l’échantillon alimentaire. Maintenant, ajoutez de la pepsine - une enzyme de digestion des protéines, de l’estomac. À pH acide, la pepsine initie la digestion gastrique en décomposant des protéines alimentaires complexes en petits peptides.

Ajoutez du bicarbonate de sodium pour augmenter le pH et arrêter la digestion gastrique. Ajoutez une solution contenant des enzymes pancréatiques et de la bile pour simuler la digestion intestinale. Transférez le mélange dans la partie supérieure d’un système de culture cellulaire à deux chambres.

La chambre inférieure contient des entérocytes différenciés de Caco-2 - une lignée cellulaire d’adénocarcinome du côlon. Une membrane de dialyse sépare la chambre supérieure de la chambre inférieure. La membrane permet la diffusion d’espèces de faible poids moléculaire.

Le mélange d’enzymes pancréatiques et de bile dans la chambre supérieure décompose les glucides, les protéines et les lipides en sous-unités plus petites, libérant du fer sous forme d’ions ferriques.

Les exhausteurs de biodisponibilité dans les aliments convertissent les ions ferriques libérés à l’état ferreux, augmentant ainsi leur solubilité. Ces ions traversent la membrane pour atteindre la chambre inférieure.

Les transporteurs d’ions métalliques dans la membrane cellulaire des entérocytes aident à l’absorption des ions ferreux. Une fois à l’intérieur, le fer se lie à l’apoferritine - une protéine de stockage du fer résultant en un complexe, la ferritine. Récoltez les cellules pour quantifier la ferritine afin d’évaluer la biodisponibilité du fer.

Pesez l’échantillon dans un tube à centrifuger stérile de 50 millilitres. Ajustez le pH à l’aide d’acide chlorhydrique et ajoutez 10 millilitres de solution saline physiologique contenant 140 millimolaires de chlorure de sodium et 5 millimolaires de chlorure de potassium. Ensuite, réglez le processus de digestion gastrique en ajoutant 0,5 millilitre de la solution de pepsine porcine préparée à l’échantillon.

Ensuite, incubez sur un shaker à bascule à un réglage doux, pendant 1 heure à 37 degrés Celsius, et lancez le processus de digestion intestinale de chaque échantillon en ajustant le pH à 5,5-6,0 avec 1,0 molaire de bicarbonate de sodium.

Ajoutez 2,5 millilitres de solution pancréatique-biliaire dans chaque tube d’échantillon et ajustez le pH à 6,9-7,0 avec 1,0 molaire de bicarbonate de sodium.

À l’aide de la solution contenant 140 millimolaires de chlorure de sodium et 5 millimolaires de chlorure de potassium, ajoutez du liquide de sorte que chaque tube contienne exactement 15 grammes de matière totale.

Maintenant, transférez 1,5 millilitre de chaque digestion intestinale dans la chambre supérieure du puits contenant les cellules Caco-2 de la plaque de culture à 6 puits. Replacez le couvercle de la plaque et incubez à 37 degrés Celsius dans 5 % de dioxyde de carbone sur un agitateur à bascule à 6 oscillations par minute, pendant 2 heures.

Retirez l’anneau d’insertion avec le digest. Ensuite, ajoutez 1 millilitre de milieu essentiel minimum à pH 7 dans chaque puits et conservez la plaque dans l’incubateur pendant 22 heures.

Maintenant, retirez le milieu de culture cellulaire et ajoutez 2 millilitres d’eau de 18 méga ohms (MΩ) à la monocouche cellulaire. Transférez-le dans un sonicateur et récoltez l’intégralité du lysat cellulaire dans des tubes de microcentrifugation pour l’analyse des protéines cellulaires et de la ferritine cellulaire.

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Dernière mise à jour : 15 août 2026