Mesure de la contraction de la SMC in vitro : une méthode non invasive pour évaluer la contraction des cellules musculaires lisses à l’aide de la détection d’impédance cellule-substrat électrique

0 vues3:45 min • July 8th, 2025

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La paroi de l’aorte est principalement composée de cellules musculaires lisses, ou SMC, contenant une machinerie protéique contractile qui se contracte et se détend pour réguler le flux sanguin aortique.

Pour mesurer la réponse contractile des CMS aortiques in vitro, obtenir une plaque multipuits contenant un réseau de capteurs ECIS (détection d’impédance cellule-substrat électrique). Chaque réseau contient des électrodes à film d’or au fond du puits, délimitées par un film isolant. Enduire les puits de gélatine.

Semez la suspension primaire de SMC humain dans les puits. Transférez la plaque de puits contenant l’ECIS vers un support de plaque connecté à un amplificateur et à un système d’acquisition de données tout en assurant le contact de l’électrode avec le support. Appliquez un petit courant alternatif constant entre les électrodes pour mesurer le potentiel à leurs bornes.

Pendant l’incubation, les CMS adhèrent et se propagent sur l’enrobage de gélatine. Les cellules se comportent comme des isolants, limitant le flux de courant entre les électrodes. Au fur et à mesure que de plus en plus de cellules se fixent à la surface, le flux de courant diminue davantage. En conséquence, l’impédance, ou l’opposition au flux de courant, et l’augmentation du potentiel. Finalement, les cellules prolifèrent sur les électrodes et forment une monocouche.

Traitez les CML avec un ionophore de calcium pour faciliter le transport des ions calcium à travers les membranes cellulaires. L’afflux d’ions calcium extracellulaires active l’appareil contractile, induisant la contraction.

Les CMS stimulés se contractent et perdent le contact entre les cellules sur les électrodes. La réduction de la couverture de surface de l’électrode qui en résulte diminue l’impédance, ce qui facilite la quantification en temps réel de la contraction du SMC.

Comptez les cellules à l’aide d’un compteur de cellules automatisé et ensemencez les SMC en trois exemplaires à une densité d’ensemencement de 30 000 cellules par puits, dans 200 microlitres de milieu SMC dans la plaque ECIS recouverte de gélatine. Placez la plaque avec les SMC dans le support ECIS à 96 puits dans l’incubateur de culture cellulaire.

Double-cliquez sur le logiciel « ECIS Applied Biophysics » pour ouvrir le programme, et appuyez sur le bouton « Setup ». Vérifiez si toutes les électrodes sont en contact avec le support, dans le panneau inférieur gauche étiqueté « Configuration du puits ». Si les électrodes ne sont pas correctement connectées, ajustez la plaque dans le support avant de commencer la mesure.

Maintenant, sélectionnez le type de plaque dans le même panneau en cliquant sur « Type de tableau ». Ensuite, préparez deux pipettes d’un volume de 2 microlitres et 150 microlitres. Avant de commencer la stimulation, appuyez sur « Mark » dans le logiciel et placez un commentaire.

Pour stimuler les cellules, retirez le couvercle et placez-le sur une surface stérile à l’intérieur de l’incubateur. Ensuite, induisez la contraction de la SMC en pipetant 2 microlitres de la solution de travail de l’ionomycine dans chaque puits le plus rapidement possible.

Une fois que toutes les cellules ont été stimulées, mélangez le milieu dans les puits à l’aide de la deuxième pipette.

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Dernière mise à jour : 15 août 2026