Essai de libération d’enzymes médiateurs humanisés : une méthode immunochimique pour dépister le potentiel allergique de l’antigène testé en surveillant la réponse de dégranulation des basophiles in vitro

0 vues5:39 min • July 8th, 2025

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Lorsqu’elles sont exposées à un allergène - antigène non pathogène - les cellules présentatrices d’antigène traitent et présentent l’allergène aux lymphocytes T auxiliaires de type 2. Ces lymphocytes T déclenchent la différenciation des lymphocytes B en plasmocytes et produisent des anticorps d’immunoglobuline E, IgE, qui se lient à des récepteurs Fc spécifiques aux IgE de haute affinité à la surface des basophiles circulants - des cellules sécrétoires contenant des granules.

Lors de l’exposition ultérieure à l’allergène, les complexes IgE-Fc reconnaissent et se réticulent avec l’allergène, activant les basophiles pour libérer des granules comprenant des médiateurs tels que des cytokines et des enzymes lysosomales, y compris la β-hexosaminidase, évoquant une puissante réponse inflammatoire

.

Pour dépister in vitro le potentiel allergique d’un antigène de test, il faut commencer par une suspension de basophiles cancéreux de rat transduits exprimant des récepteurs Fc spécifiques aux IgE humaines. Traiter avec du sérum humain contenant des IgE provenant d’un donneur allergique. Les anticorps IgE se lient aux récepteurs Fc basophiles et les sensibilisent.

Ensuite, ajoutez un tampon et un volume adéquat d’antigène de test aux basophiles sensibilisés. L’antigène, en fonction de son affinité pour les IgE liées aux récepteurs Fc, se réticule avec les anticorps et initie la dégranulation basophile, libérant des médiateurs, dont la β-hexosaminidase, dans la solution.

Recueillir la solution dans une nouvelle plaque multipuits contenant un substrat fluorogénique de β-hexosaminidase et incuber. β-hexosaminidase hydrolyse le substrat, générant un produit fluorescent. Après l’incubation, ajouter un tampon à pH élevé pour inhiber l’activité de la β-hexosaminidase et arrêter la réaction.

À l’aide d’un lecteur de microplaques, mesurez la fluorescence du produit formé, indiquant l’activité de la β-hexosaminidase libérée, et par conséquent, le potentiel allergique de l’antigène à induire la dégranulation des basophiles.

Centrifugez la suspension d’Ag8/sérum pré-incubée et transférez 50 microlitres de la suspension d’Ag8/sérum centrifugée dans chaque puits contenant des cellules RBL humanisées sans perturber la pastille de cellules Ag8.

Utilisez des cellules sensibilisées, non stimulées, sans antigène, comme contrôle sans antigène pour l’indication du plateau du signal inférieur ou du bruit de fond, et ne sensibilisez pas les puits de contrôle du bruit de fond et de la lyse maximale. Couvrez l’assiette avec le couvercle et incubez toute la nuit à 37 degrés Celsius et 5 à 7 % de dioxyde de carbone.

Aspirez le milieu cellulaire contenant des sérums. Retournez et tapotez la plaque sur le papier absorbant pour vider la plaque pour laver les cellules RBL humanisées. Lavez les cellules trois fois en ajoutant 200 microlitres de tampon Tyrode par puits, et incubez pendant environ 30 secondes par lavage, pour les deux premiers lavages. Après avoir ajouté le tampon de Tyrode pour la troisième fois, aspirez le tampon et laissez la solution dans les puits, jusqu’au moment d’ajouter la dilution de l’antigène.

Transférez 100 microlitres de solution d’antigène dans chaque puits contenant les cellules RBL pré-sensibilisées et humanisées, mais ne stimulez pas la lyse maximale et les cellules de fond non sensibilisées avec l’antigène.

Ajouter 100 microlitres de tampon de Tyrode dans les puits de contrôle de lyse maximale, les puits de contrôle de fond non sensibilisés et les puits sans antigène sensibilisés. Incuber les cellules pendant une heure à 37 degrés Celsius et à 5 % à 7 % de dioxyde de carbone.

Traitez les puits de contrôle de lyse maximale avec 10 microlitres de 10 % de Triton X-100 par puits, et mélangez correctement pour lyser complètement les cellules pour une libération de 100 % de bêta-hexosaminidase. Ajoutez 50 microlitres de solution de substrat dans une nouvelle plaque non contraignante de 96 puits.

Transférez 50 microlitres de surnageant des puits de la plaque contenant des cellules RBL humanisées dans la nouvelle plaque contenant la solution de substrat, et incubez la plaque pendant une heure à 37 degrés Celsius pour permettre la conversion du substrat fluorogène.

Ajouter 100 microlitres de solution d’arrêt par puits et mesurer la fluorescence comme décrit dans le manuscrit du texte.

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Dernière mise à jour : 15 août 2026