Essai de viabilité de la luciférase basé sur l’ATP : une méthode homogène pour évaluer le potentiel inhibiteur de croissance des agents d’essai sur les organoïdes tumoraux

0 vues3:24 min • July 8th, 2025

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L’adénosine triphosphate, ATP, la principale source d’énergie cellulaire, est vitale pour diverses fonctions cellulaires. En cas de stress, les niveaux d’ATP intracellulaires sont affectés négativement, ce qui fait de l’ATP un bon marqueur pour les cellules métaboliquement actives et viables.

Pour commencer, ensemencez la suspension des cellules tumorales dans une microplaque à paroi noire et à fond transparent pour une diffusion minimale de la lumière pendant la mesure de l’intensité lumineuse. La microplaque se compose d’un revêtement d’hydrogel qui empêche les cellules d’adhérer à la plaque, permettant l’interaction de cellule à cellule et l’auto-assemblage en organoïdes tumoraux - des cultures de tissus tridimensionnelles qui imitent le microenvironnement tumoral.

Ensuite, traitez avec un composé d’essai. Le composé testé interagit avec les cellules organoïdes et, en fonction de son potentiel inhibiteur de croissance, peut perturber les processus métaboliques producteurs d’énergie, entraînant une appauvrissement intracellulaire de l’ATP.

Après le traitement, ajoutez un réactif en une étape comprenant des détergents, des inhibiteurs de l’ATPase, l’enzyme luciférase, un substrat spécifique de la luciférase, de la luciférine et des ions magnésium. Incuber pour la durée souhaitée.

Le détergent solubilise les membranes cellulaires, provoquant la lyse cellulaire et l’extraction de l’ATP en solution, tandis que les inhibiteurs de l’ATPase inactivent toutes les ATPases endogènes libérées, stabilisant l’ATP.

Suite à son extraction, l’ATP, en présence d’ions magnésium, facilite la liaison de la luciférine à la luciférase, qui oxyde la luciférine en oxyluciférine de haute énergie qui, une fois relâchée, génère un photon bioluminescent.

À l’aide d’un luminomètre, mesurez l’intensité lumineuse produite par les photons, représentative de la concentration intracellulaire en ATP. Des quantités plus faibles d’ATP indiquent une viabilité cellulaire plus faible, ce qui suggère un potentiel inhibiteur de croissance plus élevé du composé testé.

Après 24 heures de changement de milieu, hachez les organoïdes tumoraux à l’aide d’un instrument de fragmentation et de dispersion cellulaires, équipé d’un porte-filtre contenant un filtre à mailles de 70 micromètres. Diluez 15 millimètres de suspension d’organoïde tumoral 10 fois.

Utilisez le distributeur de suspension cellulaire pour ensemencer 40 microlitres de suspension organoïde tumorale diluée dans une microplaque sphéroïde à très faible fixation de 384 puits.

Après 24 heures, à l’aide d’un manipulateur de liquides, ajoutez 0,04 microlitre de solutions d’agent d’essai à partir de 10 dilutions en série à des plages de concentration finale de 20 micromolaires à 1,0 nanomolaire dans les puits, et incubez la plaque pendant 6 jours.

À la fin de l’incubation, ajoutez le réactif de mesure de l’ATP intracellulaire dans les puits d’essai. À l’aide d’un mélangeur, mélangez le contenu de l’assiette et incubez l’assiette pendant 10 minutes à environ 25 degrés Celsius. Utilisez un lecteur de plaques pour mesurer la teneur en ATP intracellulaire sous forme de luminescence.

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Dernière mise à jour : 15 août 2026