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Techniques biologiques
0 vues • 3:25 min • July 8th, 2025
Pour énumérer les bactériophages par réaction en chaîne par polymérase quantitative, qPCR, obtenez un cocktail de réaction qPCR contenant de l’ADN polymérase Taq, des amorces, des désoxynucléotides triphosphates (dNTP) et des molécules de colorant rapporteur fluorescent dans un tampon optimisé. Transférer dans les puits d’une plaque qPCR.
Ajouter des bactériophages traités thermiquement. Le traitement thermique libère l’ADN des bactériophages à partir des particules de bactériophages. Scellez la plaque en empêchant l’évaporation du mélange. Chargez la plaque dans le système qPCR, en réglant les conditions de cycle appropriées.
Le chauffage à des températures élevées dénature l’ADN double brin en brins simples. Il active également l’ADN polymérase Taq. Le recuit provoque la liaison d’amorces spécifiques à la séquence aux brins d’ADN complémentaires du bactériophage. L’extension permet à l’ADN polymérase Taq activée d’ajouter des dNTP à l’extrémité 3' de l’amorce, prolongeant le brin d’ADN en croissance dans la direction 5' à 3'.
Les molécules de colorant s’intercalent dans l’ADN double brin nouvellement synthétisé, provoquant une augmentation de l’intensité de la fluorescence. Chaque cycle de PCR double la quantité d’ADN cible, augmentant ainsi l’intensité de la fluorescence.
Déterminez le cycle de seuil, Ct, valeur à partir duquel la fluorescence mesurée dépasse le niveau de fond.
La valeur Ct est inversement proportionnelle à la quantité d’ADN de départ, chaque génome de bactériophage équivalant à une particule de bactériophage, ce qui facilite la quantification des bactériophages à partir de la courbe standard de l’ADN des bactériophages.
Post-amplification, effectuez une analyse de la courbe de fusion, en augmentant progressivement la température de réaction. À une température de fusion spécifique, la moitié de l’ADN se sépare en brins simples, libérant des molécules de colorant et provoquant une diminution soudaine de la fluorescence.
Une température de fusion distincte, unique pour le produit qPCR, valide la spécificité du produit.
Préparez le prémélange qPCR pour 10 échantillons de phages biopanés de concentration inconnue et 7 échantillons de concentrations standard en trois exemplaires, ce qui donne un prémélange pour 51 échantillons contenant 255 microlitres de qPCR Master Mix, 51 microlitres d’amorces et 102 microlitres d’eau.
Aliquote 8 microlitres de la PCR préparée se mélangent dans 51 puits d’une plaque qPCR de 96 puits. Ensuite, ajoutez deux microlitres d’échantillons de phages T7 traités thermiquement dans chacun de ces puits, en les distribuant sous la surface du prémélange qPCR. À l’aide d’un film adhésif, scellez la plaque.
Enveloppez la plaque dans du papier d’aluminium pour minimiser le photoblanchiment par fluorescence, puis passez la plaque sur l’équipement qPCR. Configurez les conditions de cycle et les paramètres de la courbe de fusion comme indiqué dans le protocole texte.
Cet article décrit une méthode de dénombrement des bactériophages utilisant la réaction de polymérisation en chaîne quantitative (qPCR). Le processus comprend la préparation d'un mélange réactionnel pour qPCR, l'ajout de bactériophages traités par la chaleur et l'analyse de la fluorescence résultante afin de quantifier les particules de bactériophages.
Le dénombrement quantitatif des bactériophages par PCR permet une quantification précise et à haut débit de particules virales dans les flux de travail en phase de découverte. Cette approche renforce la validation robuste des cibles et le développement de tests en fournissant des résultats quantitatifs et reproductibles, essentiels pour la prise de décisions en phase précoce. L'intégration du dénombrement par qPCR dans les chaînes de production biopharmaceutiques améliore la fiabilité prédictive et le tri des portefeuilles pour les thérapeutiques à base de phages ou modulant le microbiome.
Le dénombrement des phages par qPCR s'inscrit dans la continuité entre la phase initiale de découverte et l'identification du candidat principal, fournissant des résultats quantitatifs pour le test d'hypothèses et la préparation des essais.
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Dernière mise à jour : 22 août 2026