Biopanning basé sur un biocapteur de microbalance à cristaux de quartz pour étudier les interactions protéine-médicament

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Pour étudier les interactions protéine-médicament, commencez par une puce de capteur de microbalance à cristaux de quartz, QCM, composée d’un matériau céramique piézoélectrique recouvert d’une fine couche d’or agissant comme une électrode.

Superposez l’électrode avec la solution de médicament d’essai, formant une couche uniforme.

Insérez la puce du capteur dans l’appareil QCM. Plongez-le dans une cuvette contenant un tampon. Appliquez un champ électrique, provoquant l’oscillation des cristaux de céramique à une fréquence fixe basée sur la masse des molécules de médicament sur la puce du capteur.

Ajoutez une banque de phages T7 contenant un mélange de phages génétiquement modifiés présentant des variantes peptidiques fusionnées avec la protéine de capside des phages. Les phages présentant un peptide spécifique se lient à des molécules médicamenteuses de haute affinité et s’immobilisent sur la puce du capteur. Ce panoramique des phages T7 augmente la masse sur la puce du capteur, ce qui entraîne une diminution de l’oscillation des cristaux au fil du temps.

Après l’équilibrage, transférez la puce du capteur lié au phage dans une boîte de Pétri humide. Recouvrir la puce d’une solution bactérienne et incuber. Les phages infectent les bactéries et se répliquent, produisant des phages spécifiques exprimant des peptides qui sont libérés dans la solution.

Récupérez ces phages et analysez la séquence d’acides aminés des peptides sélectionnés par affinité médicamenteuse. Comparez la séquence d’acides aminés de ce peptide avec la protéine cible.

La région présentant une grande similitude représente le site d’interaction médicamenteuse potentiel crucial pour l’interaction médicament-protéine.

Pour préparer une puce de capteur QCM, fixez une puce de capteur en céramique sur l’oscillateur d’un appareil QCM de 27 mégahertz et enregistrez la fréquence intrinsèque dans la phase aérienne avant l’immobilisation des petites molécules.

Après l’enregistrement, détachez la puce et ajoutez soigneusement une goutte de 20 microlitres d’une solution dérivée de petites molécules de 1 millimolaire dans de l’éthanol à 70 % pour créer une monocouche auto-assemblée sur l’électrode en or de la puce du capteur. Placez la puce dans une boîte de Pétri recouverte d’un tissu humide à l’abri de la lumière pendant 1 heure à température ambiante, avant de laver délicatement la surface de l’électrode avec de l’eau ultra-pure.

Séchez la puce avec une légère application d’air et chargez la puce sur l’appareil QCM. Après 1 heure, enregistrez la réduction de fréquence dans la phase aérienne pour mesurer la quantité de petite molécule qui a été immobilisée.

Pour le bio-panoramique de la banque de phages T7, placez une cuvette avec un agitateur magnétique dédié sur le biocapteur QCM réglé à 1 000 tours par minute, et ajoutez 8 millilitres de tampon de réaction dans la cuvette.

Pendant que le tampon est agité, fixez la puce du capteur QCM à l’oscillateur. Tirez le bras de l’oscillateur vers le bas pour immerger la puce dans le tampon et commencez à surveiller la fréquence QCM. Lorsque le sensorgramme s’équilibre à environ 3 Hertz par minute lors d’une dérive de fréquence, injectez 8 microlitres d’une bibliothèque de phages T7 dans la cuvette et marquez le point d’injection sur le capteur.

Surveillez la réduction de fréquence causée par la liaison des phages T7 à la petite molécule immobilisée à la surface de l’électrode d’or. Après 10 minutes, arrêtez le moniteur de fréquence QCM et soulevez rapidement l’oscillateur pour retirer la puce du capteur du lot. Détachez la puce du capteur de l’oscillateur et retirez le tampon de la puce.

Placez la puce de capteur séchée dans une boîte de Pétri humide et ajoutez une goutte de 20 microlitres de cellules hôtes d’E. coli en phase logarithmique sur l’électrode en or. Incuber la parabole sur un mélangeur à microplaques de 96 puits à 37 degrés Celsius et à 1 000 à 1 500 tours par minute pendant 30 minutes à l’abri de la lumière pour améliorer la récupération des phages T7 liés.

A la fin de l’incubation, transvaser les 20 microlitres de suspension d’E. coli dans 200 microlitres de milieu LB. Selon la procédure générale, effectuez l’isolement de la plaque de phage dans le milieu et le séquençage de l’ADN qui code les séquences peptidiques de reconnaissance de médicament affichées sur chaque capside de phage.

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Dernière mise à jour : 15 août 2026