Différenciation de cellules souches pluripotentes induites par l’homme en macrophages

0 vues4:56 min • July 8th, 2025

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Les cellules somatiques adultes peuvent être reprogrammées génétiquement pour obtenir des cellules souches pluripotentes induites, les iPSC, qui présentent des états indifférenciés et prolifératifs semblables à ceux des cellules souches.

Pour différencier les iPSC humaines en macrophages – des globules blancs qui phagocytent les agents pathogènes et les débris cellulaires – commencez par une plaque de culture avec une surface adhésive non cellulaire.

Ajoutez des milieux contenant les facteurs de croissance, la protéine morphogénétique osseuse, le facteur de cellules souches et le facteur de croissance de l’endothélium vasculaire. Ensemencez les iPSC et incubez.

La surface non adhésive empêche la fixation des iPSC et maintient les cellules en suspension, facilitant l’agrégation en corps embryoïdes tridimensionnels, EB. Les facteurs de croissance initient la différenciation des iPSC au sein des EB en cellules de la lignée mésodermique.

Transférez les EB différenciés dans un tube à centrifuger. Permettez-leur de s’installer par gravité. Remettre les EB en suspension dans un milieu frais contenant de l’interleukine-3, de l’IL3 et du facteur de stimulation des colonies de macrophages, CSF1. Placez les EB sur une plaque de culture cellulaire recouverte de gélatine.

La gélatine – une protéine de la matrice extracellulaire – facilite la fixation de l’EB. L’IL3 stimule les EB à se différencier en cellules souches progénitrices hématopoïétiques, donnant naissance à des cellules myéloïdes. Le CSF1 favorise la prolifération des cellules myéloïdes et leur différenciation en précurseurs de macrophages qui sont libérés et restent en suspension dans le milieu.

Récupérez les cellules de suspension et centrifugez. Remettre les cellules en suspension dans des milieux enrichis en CSF1.

Plaquez les cellules sur des plaques de culture non revêtues.

CSF1 induit la différenciation terminale des précurseurs des macrophages en macrophages matures pleinement fonctionnels et adhérents.

Pour commencer le processus de différenciation le jour zéro, ajoutez 2,25 millilitres de milieu de l’étape 1 dans deux puits d’une plaque à 6 puits à très faible fixation. Ensuite, pour un puits confluent à 180 % d’iPSC dans une plaque à 6 puits, remplacez le milieu de maintenance par 1,5 millilitre de milieu de niveau 1. Coupez les colonies à l’aide d’un nouvel outil de passage cellulaire. À l’aide d’une pipette, transférez les colonies coupées dans les deux puits de la plaque à 6 puits à fixation ultra-basse.

Le jour 2, ajustez les concentrations de cytokines en ajoutant 0,5 millilitre de milieu hESC-SFM dans la plaque à 6 puits contenant les corps embryoïdes du deuxième jour.

Le jour 4, enduire quatre puits d’une plaque de culture tissulaire à 6 puits avec 0,1 % de gélatine. Après l’incubation pendant au moins 10 minutes, retirez la gélatine et ajoutez 2,5 millilitres de milieu de l’étape 2.

Récupérez les corps embryoïdes formés dans les deux puits d’une plaque à 6 puits et placez-les dans un tube à centrifuger de 50 millilitres. Laissez-les se déposer au fond du tube par gravité. Ensuite, aspirez soigneusement le milieu du tube et remettez en suspension les corps embryoïdes dans 2 millilitres de milieu de stade 2.

Transférez 10 à 15 corps embryoïdes dans un puits recouvert de gélatine, contenant 2,5 millilitres de milieu de stade 2, et incubez à 37 degrés Celsius avec 5 % de dioxyde de carbone. Pendant deux à trois semaines, changez de support tous les trois à quatre jours.

Le placage des EB est crucial. Avoir moins de 10 ou plus de 15 EB, ou les avoir répartis de manière inégale, peut entraîner de faibles rendements de macrophages.

Après deux à trois semaines, les corps embryoïdes commencent à libérer des cellules hématopoïétiques non adhérentes en suspension. À l’aide d’une passoire de 40 micromètres, collectez ces cellules dans un tube de 50 millilitres, puis remplissez le média. Centrifuger la suspension de cellules hématopoïétiques à 200 x g pendant trois minutes.

Remettre en suspension les cellules hématopoïétiques dans les milieux de stade 3. Ensuite, plaquez les cellules à une densité de 0,2 x 106 par millilitre. Changez le support de l’étape 3 tous les cinq jours.

Après neuf à 11 jours, les macrophages seront complètement différenciés et pleinement fonctionnels.

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Dernière mise à jour : 15 août 2026