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Pour isoler les cellules tueuses naturelles, ou cellules NK - des globules blancs spécialisés impliqués dans l’immunité innée, commencez par du tissu hépatique humain contenant diverses populations cellulaires, y compris des cellules contenant de la graisse, des érythrocytes, des granulocytes, des lymphocytes et d’autres cellules associées piégées dans une matrice extracellulaire riche en collagène ou ECM.
Coupez le tissu en petits morceaux et transférez-les dans un tube contenant de la collagénase - une enzyme protéolytique. La collagénase clive le collagène, perturbe la matrice et desserre les cellules liées à l’ECM.
Insérez le tube dans un dissociateur tissulaire. Cette dissociation mécanique désintègre davantage l’ECM pour libérer des cellules faiblement attachées dans la solution. Filtrez le contenu pour éliminer les tissus non digérés et les fragments de MEC et collectez le filtrat contenant diverses cellules.
Remettez les cellules en suspension dans un tampon contenant de la polyvinylpyrrolidone ou des billes de silice enrobées de PVP. Les billes PVP se lient sélectivement aux cellules contenant de la graisse, les séparant efficacement du reste des cellules.
Centrifuger à basse vitesse pour granuler la population cellulaire ; jeter le surnageant contenant des débris et des cellules graisseuses liées à des billes. Remettez la pastille en suspension et superposez la suspension cellulaire sur un tube contenant un milieu à gradient de densité pour séparer les cellules en fonction de leur densité.
Centrifugeuse à basse vitesse. Les érythrocytes et les granulocytes de plus haute densité se déposent au fond, tandis que les lymphocytes apparaissent à l’interphase entre deux liquides.
Collectez les cellules de l’interphase et cultivez-les dans un milieu sélectif pour l’expansion des cellules NK.
Commencez par identifier et sectionner les zones de tissus viables à l’aide d’un équipement chirurgical stérile pour obtenir des lymphocytes. Ensuite, placez les tissus sectionnés dans 30 millilitres de HBSS sans calcium ni magnésium, et conservez les tissus sur de la glace jusqu’à ce qu’ils soient prêts à être isolés.
À l’intérieur d’une enceinte de biosécurité, coupez le tissu en cubes de moins de 0,5 centimètre à l’aide de lames de rasoir stériles et de pinces. Placez les morceaux de tissu hachés – pas plus de 4 grammes – dans les tubes dissociateurs de tissus et ajoutez 10 millilitres de collagénase IV aux morceaux de tissu.
Pour hacher complètement le tissu, traitez les tubes de dissociation tissulaire dans un dissociateur de tissu à 37 degrés Celsius. Après avoir retiré les tubes du dissociateur tissulaire, triturez le tissu haché à travers une passoire à cellules de nylon de 40 microns à l’aide de l’extrémité arrière d’une seringue de 5 millilitres. Jetez les gros fragments non digérés.
Faites tourner l’éluant collecté à 400 g pendant 5 minutes à température ambiante et aspirez le surnageant avant de remettre en suspension les pastilles cellulaires dans de la silice enrobée de polyvinylpyrrolidone à 30 % pour éliminer les cellules graisseuses. Faites tourner les cellules comme décrit, avant de remettre en suspension la pastille cellulaire dans 9 millilitres de milieu R-10.
Pour séparer les lymphocytes des globules rouges et des cellules polymorphonucléaires, superposez soigneusement la suspension cellulaire sur 4 millilitres de Ficoll ou de milieu de séparation des lymphocytes. Séparez les couches en centrifugeant à 400 g pendant 23 minutes à température ambiante avec l’accélération et les freins désactivés. Ensuite, décantez soigneusement la couche moyenne supérieure et récoltez l’interphase contenant les lymphocytes infiltrant les tissus.
Rincez les cellules avec 10 millilitres de milieu et procédez à l’analyse du protocole d’expansion des cellules Natural Killer, ou NK.