Caractérisation des pièges extracellulaires de macrophages dans des échantillons de tissu pulmonaire de souris

0 vues4:49 min • July 8th, 2025

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Les pièges extracellulaires à macrophages, les MET, sont des structures en forme de toile libérées par les macrophages pour piéger et éliminer les agents pathogènes.

Les MET comprennent des fibres de chromatine extracellulaires associées à la métalloprotéinase matricielle-9, à la MMP-9 et à l’histone citrullinée H3, H3Cit - une protéine d’histones modifiée dans laquelle l’arginine est convertie en citrulline.

Pour caractériser les MET dans des coupes de tissu pulmonaire murin fixées au formol et incluses dans de la paraffine, il faut d’abord sécher les lames. Immerger dans le xylène pour déparaffiniser les sections. Utilisez de l’éthanol aqueux pour réhydrater les sections.

Chauffez les sections pour briser les réticulations protéiques induites par le formol, exposant les antigènes cibles pour la liaison ultérieure des anticorps.

Ajouter une solution contenant des protéines pour bloquer les sites de liaison non spécifiques. Incuber avec un cocktail d’anticorps primaires anti-MMP-9, anti-H3Cit et anti-F4/80.

L’anticorps anti-F4/80 se lie à la glycoprotéine F4/80 de surface des cellules de macrophages. Les anticorps anti-MMP-9 et anti-H3Cit se lient respectivement au MMP-9 et au H3Cit dans les MET. Ajoutez différents anticorps secondaires conjugués aux fluorophores qui se lient à leurs anticorps primaires respectifs liés à leurs cibles.

Montez les sections avec un support de montage contenant DAPI. Le DAPI colore les fibres de chromatine des METs. À l’aide d’un microscope confocal, imagez les coupes pour visualiser la fluorescence des marqueurs MET.

Les MET sont caractérisés par leurs fibres de chromatine extracellulaires et la co-expression de F4/80, MMP-9 et H3Cit.

Pour prétraiter les échantillons FFPE avec une solution de récupération d’antigène, séchez les lames au four à 60 degrés Celsius pendant 60 minutes. Ensuite, transférez les lames dans une solution de xylène pendant 30 minutes, avant de transférer les échantillons dans de l’éthanol à 70 % à température ambiante pendant 5 minutes.

Après avoir utilisé de l’eau du robinet pour rincer les lames, placez-les dans une pellicule plastique résistante à la chaleur et soumettez-les à une récupération d’antigène plus élevée en les plaçant dans un autocuiseur à Tris-EDTA pH 9,0 pendant 10 minutes. Refroidissez les échantillons pendant 20 minutes et transférez-les dans l’eau du robinet. Ensuite, placez-les sur une bascule pendant 5 minutes. Répétez le lavage à l’eau du robinet, puis lavez les lames une fois en PBS sur la bascule.

Pour bloquer les échantillons, ajoutez 10 % de sérum de poulet dans 5 % de BSA/PBS et incubez-les à température ambiante pendant 30 minutes. Ensuite, pour définir les pièges extracellulaires des macrophages, ou METs dans les macrophages, ajoutez une dilution de 1 à 100 d’anticorps primaires dans 1 % de BSA/PBS et incubez les lames à 4 degrés Celsius pendant 16 heures.

Utilisez PBS pour laver les échantillons deux fois sur une bascule pendant 5 minutes chacune. Ajoutez les anticorps secondaires fluorescents correspondants dans 1 % de BSA/PBS et incubez les lames à température ambiante pendant 40 minutes. Après les lavages PBS, utilisez un milieu de montage contenant du DAPI pour colorer la chromatine et monter les échantillons.

À l’aide d’une tête de balayage laser confocale fixée à un microscope inversé, capturez des images fluorescentes à l’aide d’objectifs à air 20X 0,1 NA et 40X 1,0 NA à huile. Capturez des images à plan unique de 512 x 512 pixels en cliquant sur le bouton de nivellement séquentiel. Obtenez au moins 10 champs de vision par section pour l’analyse et des données pour chaque résultat.

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Dernière mise à jour : 15 août 2026