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L’encéphalomyélite auto-immune expérimentale (EAE) est une maladie du système nerveux central. Les auto-anticorps ciblent la glycoprotéine oligodendrocytaire de myéline, MOG, sur la gaine de myéline des neurones, provoquant la destruction de la myéline et la dégénérescence nerveuse.
L’induction de l’EAE chez la souris nécessite l’injection d’une émulsion adjuvante de l’antigène MOG de l’antigène mélangée à un adjuvant - contenant un antigène bactérien - pour améliorer la réponse immunitaire.
Pour préparer l’émulsion, prélever une suspension aqueuse de MOG dans un tube d’homogénéisation. Placez le tube sur de la glace, empêchant la dégradation de l’antigène.
Ajouter l’adjuvant - des bactéries pathogènes inactivées dispersées dans une phase huileuse. Placez le tube à l’intérieur d’un homogénéisateur à agitation. L’agitation provoque des turbulences dans le fluide, générant une émulsion.
Au microscope, l’émulsion montre des gouttelettes aqueuses uniformément dispersées, de taille microscopique, contenant du MOG, dans une phase huileuse continue. L’homogénéité de l’émulsion assure une plus grande reproductibilité de l’induction de la maladie.
Pour injecter l’émulsion dans une souche sensible de souris, fixez une seringue à l’avant du tube et transférez-y l’émulsion. Prenez une souris anesthésiée et injectez l’émulsion par voie sous-cutanée.
Lors de l’injection, l’huile contenue dans l’émulsion assure une libération lente et soutenue de l’antigène, augmentant ainsi la durée de la réponse immunitaire.
L’agent pathogène inactivé dans l’émulsion provoque une réponse inflammatoire localisée, recrutant des cellules immunitaires au site d’injection. Les cellules immunitaires recrutées reconnaissent l’antigène MOG libéré et stimulent la production d’anticorps, ce qui conduit à l’induction de l’EAE.
Placez le tube à bouchon vissé dans les réactifs à utiliser sur de la glace. Ensuite, ajoutez les composants de l’émulsion. D’abord, le PBS, puis le peptide, le lisier CFA, et enfin, l’IFA. Fermez fermement le tube avec le capuchon en le serrant et en le desserrant plusieurs fois. Agitez vigoureusement le tube pendant 5 à 10 secondes à la main pour pré-mélanger les réactifs.
Placez le tube dans l’homogénéisateur à secouer et fixez-le avec la tige. Réglez la vitesse sur le réglage le plus élevé et le temps sur 60 secondes. Une fois la course terminée, placez le tube sur de la glace pendant 3 minutes et répétez la course 1 ou 2 fois de plus avec les mêmes réglages. Centrifugez le tube à 300 x g pendant 1 minute pour éliminer l’air emprisonné et compacter l’émulsion. Retirez le capuchon du tube, insérez le piston dans le tube et poussez-le lentement vers le bas jusqu’à ce qu’il atteigne le haut de l’émulsion. Retirez le boîtier encliquetable au bas du tube en le tournant.
Ensuite, retirez le piston de toutes les seringues d’injection et ajoutez une aiguille aux seringues d’injection. Ensuite, fixez l’extrémité arrière de la seringue d’injection au verrou dédié au bas du tube et verrouillez-le avec une courte rotation. Transférez l’émulsion du tube à la seringue d’injection en poussant doucement le piston.
Arrêtez-vous lorsque l’émulsion atteint la graduation de 0,15 millilitre de la seringue d’injection. Séparez la seringue d’injection du tube et insérez le piston avec précaution, en veillant à ce qu’aucun air ne pénètre dans la seringue. Poussez le piston jusqu’à ce que l’émulsion sorte de l’aiguille, et répétez le processus pour le reste de l’émulsion présente dans le tube.
Pour analyser la taille des particules d’eau dans l’huile, ajoutez une petite goutte de l’émulsion à une lame de microscope, étalez-la avec une lamelle, puis poussez fort dans un mouvement circulaire pour aplatir l’émulsion.
Examinez l’émulsion frottée à l’aide d’un microscope à contraste de phase avec un grossissement de 400 fois et concentrez-vous sur un champ avec une monocouche de l’émulsion. Assurez-vous que de petites particules grises ou blanches uniformes sont visibles.