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Pour commencer le test d’unité formant une colonie, ou UFC, afin de quantifier les bactéries viables, prenez une plaque multipuits contenant des macrophages cultivés dans un milieu de croissance. Infecter les macrophages avec Listeria monocytogenes, une bactérie pathogène capable de croissance intracellulaire.
Au cours de l’infection, les macrophages engloutissent les bactéries, internalisant les bactéries dans un compartiment délimité par une membrane - un phagosome.
Les bactéries sécrètent une toxine qui forme des pores et perturbent la membrane phagosomale. Ainsi, les bactéries sont autorisées à pénétrer dans le cytosol et à se répliquer dans les macrophages.
Traitez brièvement les macrophages infectés avec de la gentamicine, un antibiotique qui élimine sélectivement les bactéries non internalisées tout en préservant les bactéries intracellulaires.
Aspirez le milieu sus-jacent contenant des antibiotiques. Ensuite, ajoutez de l’eau distillée stérile sur les macrophages infectés, créant ainsi un environnement hypotonique. Cela conduit à l’osmose, où les molécules d’eau pénètrent dans les cellules et provoquent la lyse des macrophages, libérant les composants intracellulaires, y compris les bactéries.
Étalez le lysat cellulaire contenant des bactéries intracellulaires sur la plaque de gélose de lysogénie, favorisant la séparation des cellules bactériennes individuelles et permettant leur croissance indépendante. Pendant l’incubation, des bactéries viables se développent à la surface de la gélose et forment des colonies distinctes.
Comptez les colonies sur la plaque et obtenez l’UFC, représentant les bactéries intracellulaires qui ont échappé à la réponse immunitaire de l’hôte et se sont répliquées avec succès dans les macrophages infectés.
Pour récolter, inclinez légèrement le plat et utilisez soigneusement une pipette pour retirer tout le média du puits. Ajoutez 0,5 millilitre d’eau distillée stérile dans le puits. Après 30 secondes, transférez le lysat d’eau obtenu dans un tube de microcentrifugation de 1,5 millilitre et agitez vigoureusement pendant 10 secondes.
Ajoutez 4,5 microlitres et 50 microlitres de lysat d’eau à 450 microlitres d’eau distillée stérile pour préparer les dilutions 10 fois et 100 fois. Brièvement, vortex pour assurer un mélange complet. Ajouter 50 microlitres des échantillons originaux 10 fois dilués et 100 fois dilués sur des plaques de gélose au bouillon de lysogénie et étaler à l’aide d’un épandeur de plaques.
Pour doser la Lm émergente, extrayez 10 microlitres de milieu de recouvrement de la boîte et divisez-le en deux aliquotes de 5 microlitres dans des tubes de microcentrifugation. Ajouter 5 microlitres de DMEM/FCS à une aliquote et ajouter 5 microlitres de DMEM/FCS contenant 5 microlitres par millilitre de gentamicine à la deuxième aliquote comme témoin.
Attendre 5 minutes à température ambiante. Ajoutez 90 microlitres d’eau distillée stérile à chaque aliquote et agitez vigoureusement le tube pendant 10 secondes. Ensuite, ajoutez 50 microlitres de l’échantillon sur des plaques de gélose LB et étalez à l’aide d’un épandeur de plaques. Conservez les plaques dans un incubateur à 37 degrés Celsius pendant deux jours avant de dénombrer les colonies de Lm.