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Prenez une chambre d’imagerie contenant une culture de cellules épithéliales humaines chargées d’un indicateur fluorescent de calcium intracellulaire.
Ajouter un milieu de croissance contenant des ions calcium. Introduisez Shigella, une bactérie pathogène, et incubez.
Le système de sécrétion bactérienne pénètre dans la cellule hôte et libère des effecteurs d’invasion. L’invasion déclenche le réarrangement de l’actine, formant une ébouriffement de la membrane autour des bactéries.
Au site d’invasion, la phospholipase C, ou PLC, sur la membrane plasmique est activée et les récepteurs de l’inositol triphosphate se regroupent sur le réticulum endoplasmique ou RE.
Le PLC hydrolyse le phosphatidylinositol 4,5-bisphosphate de membrane en inositol triphosphate, ou IP3, qui s’accumule localement en raison d’un réseau d’actine dense.
L’IP3 se lie aux récepteurs du RE, provoquant la libération de calcium. Les indicateurs de calcium se lient aux ions libérés et émettent de la fluorescence, affichant une réponse calcique locale.
L’IP3 se diffuse lentement à travers l’actine, ce qui réduit encore le taux de calcium du RE et active un canal calcique de la membrane plasmique, entraînant un afflux de calcium.
La fluorescence à travers la cellule indique une réponse globale retardée du calcium.
Placez la lamelle contenant les cellules Fluo-4 dans une chambre d’imagerie ou à fond de verre. Utilisez un tampon EM pour laver l’échantillon trois fois afin d’éliminer les composés pouvant résulter de la lyse cellulaire. Ensuite, ajoutez un millilitre de tampon EM. Placez la chambre sur une platine de microscope à fluorescence inversée, chauffée à 33 degrés Celsius. Sélectionnez un champ de microscopie et configurez les paramètres d’acquisition, y compris le temps d’exposition et le binning, si nécessaire, pour optimiser le signal fluorescent Fluo-4.
Pour ajouter des bactéries à l’échantillon, retirez soigneusement 500 microlitres de tampon EM de la chambre et ajoutez 500 microlitres de suspension bactérienne pour obtenir une DOfinale de 600 de 0,05. Effectuez immédiatement une acquisition, ou attendez 10 minutes pour permettre aux bactéries de se sédimenter sur les cellules. À la fin du flux d’acquisition, acquérir une image en contraste de phase du champ sélectionné pour visualiser les bactéries en contact avec les cellules et les volants membranaires associés aux sites d’invasion bactérienne.
Répétez la procédure d’acquisition à des intervalles adaptés à la durée des acquisitions d’images, à l’enregistrement des fichiers et à la sélection d’un nouveau champ pour couvrir l’ensemble du processus. A la fin de la procédure d’acquisition, ajouter à l’échantillon, deux micromolaires de l’ionophore calcique ionomycine pour déterminer l’amplitude maximale des signaux calciques. Acquérez des images toutes les 3 à 5 secondes jusqu’à ce que le signal se stabilise, généralement pendant moins de 10 minutes.
Poursuivez en ajoutant le chélateur de calcium EGTA à une concentration finale de 10 millimolaires pour déterminer le signal fluorescent en l’absence de calcium. Acquérir des images toutes les 3 à 5 secondes jusqu’à stabilisation du signal, généralement pendant moins de 10 minutes. Effectuer l’analyse d’images selon le protocole texte.