Un test pour étudier le rôle de la vitronectine dans l’adhésion bactérienne aux cellules épithéliales de l’hôte

0 vues3:53 min • July 8th, 2025

Prenez une plaque multi-puits contenant des monocouches de cellules épithéliales adhérentes. Remplacez le milieu par un milieu sans sérum, évitant ainsi l’interférence des protéines sériques. Après l’incubation, retirer le milieu. Lavez les cellules avec un tampon. Ajoutez un milieu réfrigéré sans sérum contenant de la vitronectine. Incuber à des températures plus basses.

Le domaine RGD N-terminal de la vitronectine se lie aux récepteurs de l’intégrine de surface des cellules épithéliales. Les températures plus basses inhibent l’internalisation cellulaire du complexe vitronectine-intégrine.

Après la saturation des récepteurs de l’intégrine, retirez le milieu. Laver avec un tampon pour éliminer l’excès de vitronectine, qui pourrait avoir un impact sur la liaison de l’intégrine dépendante de la vitronectine.

Ajouter Haemophilus influenzae de type f, ou Hif, une suspension pathogène bactérien à Gram négatif. Couver.

La protéine H à la surface de Hif se lie à l’extrémité C-terminale de la vitronectine, facilitant l’adhésion de Hif à la cellule épithéliale et l’internalisation ultérieure.

Retirez le support et lavez-le avec un tampon pour éliminer le Hif non lié. Utilisez une enzyme de détachement cellulaire pour récolter les cellules. Ajoutez un milieu contenant du sérum pour arrêter la réaction enzymatique. Transférez la suspension cellulaire dans un tube de verre contenant des billes de verre. Vortex pour lyser les cellules, libérant des bactéries internalisées et attachées à la surface.

Diluez le lysat avec un milieu sans sérum et graines-graines sur une plaque de gélose au chocolat. Incuber pour que Hif forme des colonies. Comptez les colonies.

Un nombre plus élevé de colonies indique une meilleure adhérence de Hif aux cellules épithéliales en présence de vitronectine.

Cultiver des cellules épithéliales A549 comme décrit dans le protocole de texte. Après un lavage et une trypsinisation des cellules à 37 degrés Celsius, diluez la suspension cellulaire à 5 000 cellules par millilitre à l’aide d’un milieu complet contenant 5 microgrammes par millilitre de gentamicine.

Avant l’infection bactérienne, remplacez le milieu dans les puits par un milieu F12 et incubez toute la nuit à 37 degrés Celsius. Lavez la cellule monocouche trois fois avec 1 millilitre de PBS à température ambiante. Ensuite, placez l’assiette sur de la glace et ajoutez 200 microlitres de milieu F12 pré-réfrigéré, contenant 10 microgrammes par millilitre de vitronectine.

Après avoir incubé la plaque à 4 degrés Celsius pendant 1 heure, jetez la solution par pipetage et lavez la couche cellulaire deux fois avec 1 millilitre de PBS à température ambiante. Ajoutez 100 microlitres de Hif de type sauvage fraîchement cultivé dans un milieu F12 dans chaque puits. Incuber la plaque pendant 2 heures à 37 degrés Celsius. Ensuite, aspirez le milieu à l’aide d’une pipette et lavez les cellules épithéliales A549 trois fois avec du PBS à 50 microlitres par puits de solution de détachement cellulaire, puis une incubation de 5 minutes à 37 degrés Celsius.

Ensuite, ajoutez 50 microlitres de milieu complet F12 par puits pour arrêter la réaction enzymatique. Transférez les cellules épithéliales de chaque puits dans un tube de verre de 6 millilitres contenant 4 billes de verre. Lyser les cellules à température ambiante en tourbillonnant pendant 2 minutes.

Après avoir dilué le lysat cellulaire 100 fois, déposer 10 microlitres de l’échantillon dilué sur une plaque de gélose au chocolat. Comptez les colonies après une incubation d’une nuit à 37 degrés Celsius.

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Dernière mise à jour : 29 août 2026