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Commencer par une culture décongelée de Mycobacterium bovis BCG lux, une souche bioluminescente génétiquement modifiée de Mycobacterium bovis atténuée exprimant l’enzyme rapporteure luciférase.
Inoculer la suspension dans une fiole de culture contenant le milieu de croissance supplémenté en hygromycine antibiotique. Couver. BCG lux héberge le gène résistant à l’hygromycine, facilitant sa survie et sa croissance.
Après l’incubation, préparer des dilutions de culture appropriées à l’aide d’un tampon dans des tubes de luminomètre. Transfert vers le luminomètre, chargé d’une solution de substrat d’aldéhyde aliphatique à longue chaîne. Au cours de la course, l’aldéhyde est injecté dans la suspension mycobactérienne qui pénètre dans les cellules.
La luciférase bactérienne catalyse l’oxydation du mononucléotide de flavine réduite endogène et de l’aldéhyde, ce qui entraîne l’émission de lumière bleu-vert. L’intensité de bioluminescence mesurée indique l’activité métabolique du BCG lux et est corrélée à la mesure de bactéries viables ou d’unités formant colonies, UFC.
Ensuite, centrifugez la culture mycobactérienne restante. Remettre en suspension la pastille mycobactérienne dans un tampon contenant un tensioactif non ionique pour éviter l’agglutination mycobactérienne.
À l’aide des mesures de bioluminescence, diluez la suspension pour obtenir la densité cellulaire souhaitée. Préparez des dilutions en série de mycobactéries et placez-les sur des plaques de gélose nutritive enrichies en hygromycine. Incuber, permettant à BCG lux de former des colonies.
Calculez l’UFC pour confirmer la corrélation avec l’intensité de la bioluminescence. L’inoculum BCG lux préparé peut être utilisé pour les études d’infection.
Pour commencer, décongelez un stock de glycérol congelé de 1,2 millilitre de Mycobacterium bovis BCG lux. La souche vaccinale montréalaise s’est transformée avec le plasmide navette PSMT-1 portant les gènes luxAB. Dans une fiole Erlenmeyer de 250 ml étiquetée, inoculer 15 millilitres de bouillon Middlebrook 7H9 avec la cote décongelée de 1,2 millilitre de BCG lux.
Placez le flacon dans un récipient de biosécurité scellé et incubez à 37 degrés Celsius dans un incubateur à agitateur orbital à 220 tr/min pendant 72 heures. Après l’incubation, préparez une à 10 dilutions de la culture dans une solution saline tamponnée au phosphate dans des tubes luminomètres. Vortex et chargez les tubes du luminomètre dans le luminomètre.
Chargez le substrat 1 % n-décyl aldéhyde dans de l’éthanol absolu dans la plate-forme de l’injecteur et mesurez la bioluminescence. Convertir la bioluminescence en unités formant des colonies pour contrôler la croissance de la culture de BCG lux.
Transférez la culture dans un tube à centrifuger et centrifugez à 2 175 fois g pendant 10 minutes à température ambiante pour granuler les cellules. Jeter le surnageant dans un désinfectant approprié dont l’activité mycobactéricide est connue. Lavez la pastille cellulaire deux fois dans 50 millilitres de PBS-T en la centrifugant à 2 175 fois g pendant 10 minutes pour éviter l’agglutination bactérienne.
Après le lavage final, décantez les déchets surnageants et remettez en suspension la pastille de cellules mycobactériennes dans le volume requis de PBS-T pour diluer la suspension mycobactérienne à la densité cellulaire souhaitée. Ensuite, préparez des dilutions en série de 10 fois de l’inoculum dans des plaques de 24 puits à l’aide de PBS-T.
Déposer 10 microlitres de chaque dilution sur des plaques de gélose Middlebrook 7H11 en double pour énumérer le nombre d’UFC de l’inoculum.