Technique permettant d’établir un modèle d’infection bactérienne dans une culture d’organe ex vivo

0 vues2:52 min • July 8th, 2025

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Prenez une culture d’organe placentaire humain cultivée sur une matrice extracellulaire, ou ECM.

La culture présente une structure semblable à celle d’une villosité avec un syncytium externe – une couche de trophoblaste multinucléé – et des cytotrophoblastes sous-jacents, ou TCC, qui se différencient en trophoblastes extravilleux, ou TEV, qui s’ancrent dans la MEC.

Introduire Listeria monocytogenes, une bactérie pathogène.

Les internalines – les protéines de surface bactériennes – se lient aux récepteurs EVT, facilitant l’internalisation bactérienne via l’endocytose.

Les bactéries internalisées sécrètent des toxines formant des pores et des phospholipases qui perforent la membrane vacuolaire, médiant sa rupture et sa fuite bactérienne dans le cytoplasme.

Les bactéries échappées recrutent la machinerie de l’hôte pour la polymérisation de l’actine, les propulsant vers la membrane de la cellule hôte.

La sécrétion d’un facteur de virulence bactérienne induit la formation de protubérances sur la membrane hôte. Les cellules voisines engloutissent la protrusion contenant des bactéries, provoquant la propagation de l’infection.

La bactérie se propage via les EVT vers les CBT sous-jacentes.

Ajoutez un antibiotique pour éliminer les bactéries extracellulaires, en préparant le modèle d’infection pour l’analyse.

Avant de commencer l’infection, inoculer une seule colonie de L. monocytogenes à partir d’une plaque de gélose de perfusion cerveau-cœur striée dans 3 millilitres de bouillon de perfusion cerveau-cœur. Incuber la culture pendant la nuit dans une position inclinée à 30 degrés Celsius pour permettre à la croissance bactérienne d’atteindre une phase stationnaire.

Le lendemain matin, utilisez une pince à épiler stérile pour retirer tous les morceaux de culture d’organe flottants qui n’ont pas envahi la matrice extracellulaire, et aspirez soigneusement le milieu du fond de chaque puits de transfusion. Ensuite, pipetez doucement 1 millilitre de PBS chaud dans les transpuits supérieur et inférieur deux fois, en retirant chaque lavage avec une aspiration soigneuse.

Après le deuxième lavage, pipetez doucement 1 millilitre du milieu approprié aux transpuits supérieur et inférieur en prenant soin de ne pas déranger les cultures d’organes et remettez les cultures dans l’incubateur pendant une heure.

À la fin de l’incubation, remplacez le milieu dans le haut des puits par 1 millilitre d’inoculum, et remettez les plaques dans l’incubateur de culture cellulaire pour faciliter l’invasion bactérienne, en remplaçant quotidiennement tout le milieu dans chaque puits.

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Dernière mise à jour : 1 août 2026