$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Commencez par une culture de macrophages adhérente.
Ajoutez des cytokines pro-inflammatoires.
La cytokine se lie aux récepteurs de surface des macrophages, initiant une série d’événements inflammatoires.
Tout d’abord, la signalisation des cytokines déclenche la production de peptides antimicrobiens.
Simultanément, la chromatine à l’intérieur du noyau du macrophage subit une décondensation.
Ce processus, associé à des modifications de la composition de la membrane, perturbe la membrane nucléaire, libérant de la chromatine décondensée dans le cytoplasme.
Dans le cytoplasme, le peptide antimicrobien interagit avec la chromatine libérée.
La perméabilisation de la membrane cellulaire médiée par la signalisation des cytokines provoque la libération de la chromatine décondensée dans l’espace extracellulaire, formant un piège extracellulaire à macrophages, ou MET.
Ces structures en forme de toile sont constituées d’ADN, d’histones, de molécules antimicrobiennes et d’enzymes.
Ajoutez du vert SYTOX, un colorant d’acide nucléique fluorescent qui se lie sélectivement à l’ADN exposé dans les pièges extracellulaires.
Sous un microscope à fluorescence, le MET apparaît sous la forme de traînées vertes d’ADN extracellulaire libérées par le macrophage stimulé.
Dans des conditions stériles, préparer le milieu de culture contenant différents stimulateurs de libération de MET dans le milieu RPMI 1640 complet. Pour les expériences de stimulation à l’acide hypochloreux, préparez 200 micromolaires d’acide hypochloreux dans un tube Falcon avec HBSS qui a été préchauffé à 37 degrés Celsius.
Après le traitement de polarisation, aspirez le milieu cellulaire de chaque puits et lavez soigneusement les cellules trois fois avec des aliquotes de 1 millilitre de PBS stérile pour la stimulation par PMA, TNF-alpha et interleukine-8, ou HBSS pour la stimulation par acide hypochloreux.
Après avoir retiré le PBS lors de l’étape finale de lavage, ajoutez 1 millilitre de milieu complet contenant du PMA, du TNF-alpha ou de l’interleukine-8. Incuber les cellules à 37 degrés Celsius et à 5 % de dioxyde de carbone dans un incubateur cellulaire pendant six heures pour la stimulation TNF-alpha et 24 heures pour la stimulation PMA ou interleukine-8.
Pour les expériences avec de l’acide hypochloreux, après avoir retiré le HBSS lors de la dernière étape de lavage, ajoutez 1 millilitre d’acide hypochloreux fraîchement préparé. Ensuite, incubez les cellules pendant 15 minutes à 37 degrés Celsius en présence de 5 % de dioxyde de carbone dans un incubateur de cellules. Après cela, aspirez soigneusement le surnageant cellulaire et lavez les cellules trois fois avec des aliquotes de 1 millilitre de HBSS.
Après avoir retiré le HBSS de l’étape de lavage finale, ajoutez 1 millilitre de milieu de culture RPMI 1640 complet. Ensuite, incubez les cellules pendant 24 heures à 37 degrés Celsius en présence de 5 % de dioxyde de carbone dans un incubateur de cellules.
Préparer le colorant vert SYTOX dans HBSS à une concentration de 40 micromolaires. Ajoutez directement 25 microlitres de colorant dans chaque puits contenant HMDM. Incuber les cellules à température ambiante pendant 5 minutes dans l’obscurité. Ensuite, placez le HMDM dans des puits de culture tissulaire sur la platine du microscope à fluorescence inversée pour l’imagerie.
Allumez une source lumineuse fluorescente à large spectre, une source lumineuse à champ vif et un microscope inversé installés avec un appareil photo numérique couleur haute résolution. Tournez la roue à filtres jusqu’à la position numéro 2 pour une fluorescence verte avec excitation à 504 nanomètres et émission à 523 nanomètres.
À l’aide de l’objectif 5X, faites la mise au point de l’image avec la mise au point grossière, puis les boutons de mise au point fine du microscope jusqu’à ce que l’image apparaisse nette, claire et nette. Passez le microscope en mode caméra.
Démarrez le logiciel associé. Cliquez sur le bouton Lecture pour prévisualiser l’image et ajustez le bouton de mise au point fine sur le microscope jusqu’à ce que l’image apparaisse nette, claire et nette dans la fenêtre d’aperçu du logiciel. Cliquez sur le bouton Capturer.
Dans le logiciel, cliquez sur Fichier, Enregistrer comme type de fichier image requis. Sur le microscope, tournez la roue à filtres sur la position 5 pour l’imagerie en fond clair et répétez les procédures de capture pour obtenir l’image en fond clair correspondante.