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$$\longrightharp{xx}$$,
Prenez une solution de gadolinium paramagnétique réactive aux champs magnétiques externes.
Introduisez des échantillons de sang de Rhésus ou de facteur Rh positif et de facteur Rh négatif non marqués.
Ajoutez des billes de polymère basse densité enrobées d’anticorps anti-RhD et des billes haute densité non enrobées.
Les anticorps anti-RhD se lient aux antigènes RhD sur les globules rouges Rh positifs, formant des complexes billes et globules rouges.
Maintenant, chargez l’échantillon dans un tube capillaire et scellez-le. Placez le tube entre les aimants dans le dispositif de lévitation magnétique.
Dans le champ magnétique généré par des aimants orientés vers des pôles identiques, la solution paramagnétique exerce des forces magnétiques et de flottabilité sur les composants de l’échantillon, les faisant léviter à des hauteurs proportionnelles à leurs densités.
Les billes de faible densité et de haute densité lévitent respectivement en haut et en bas du capillaire, établissant des références de hauteur de densité.
Les cellules sanguines, étant diamagnétiques, sont repoussées par un fort champ magnétique près des aimants et lévitent à une position intermédiaire.
Les complexes billes et globules rouges lévitent entre les billes de faible densité et les globules rouges, avec des cellules fluorescentes dans cette couche confirmant la présence de globules rouges à Rh positif.
Pour commencer, utilisez le dispositif lancette en un clic pour piquer le doigt du donneur de sang positif au facteur Rhésus et prélevez 10 microlitres de sang dans 1 millilitre de DPBS. Ajoutez 1 microlitre de colorant fluorescent dans une suspension de 1 millilitre de cellules positives au facteur Rhésus pour colorer par fluorescence la membrane plasmique, et incubez à 37 degrés Celsius pendant 15 minutes. Granulez les cellules en les faisant tourner à 5 600 fois g pendant 15 secondes et lavez la pastille trois fois, en utilisant 1 millilitre de DPBS. Remettre en suspension la pastille dans 1 millilitre de HBSS avec du calcium et du magnésium. Utilisez l’autopiqueur en un clic pour piquer le doigt du donneur de sang négatif au facteur Rhésus et prélever deux microlitres de sang.
Pour préparer le tube expérimental contenant uniquement des billes, ajoutez 174 microlitres de HBSS avec du calcium et du magnésium, 1 microlitre de billes de contrôle IgG, 1 microlitre de billes lourdes, avec une densité de 1,2 gramme par millilitre, et 24 microlitres de gadolinium 500 millimolaires.
Pour préparer le tube de contrôle expérimental contenant des IgG, ajoutez 172 microlitres de HBSS avec du calcium et du magnésium, 1 microlitre de billes de contrôle IgG, 1 microlitre de billes lourdes, 1 microlitre de sang négatif au facteur Rhésus, 1 microlitre de suspension sanguine positive au facteur rhésus coloré et 24 microlitres de gadolinium 500 millimolaires.
Pour préparer le tube expérimental d’échantillon, ajoutez 172 microlitres de HBSS avec du calcium et du magnésium, 1 microlitre de billes enrobées d’anti-RhD, 1 microlitre de billes lourdes, 1 microlitre de sang négatif au facteur rhésus, 1 microlitre de suspension sanguine positive au facteur rhésus coloré et 24 microlitres de gadolinium 500 millimolaires. Installez le dispositif de lévitation magnétique et chargez 50 microlitres de l’échantillon dans un tube capillaire jusqu’à ce que le tube soit rempli.
Scellez les extrémités du tube capillaire avec un scellant capillaire, en veillant à ce qu’il n’y ait pas de bulles. Placez le tube capillaire dans le support capillaire entre les aimants supérieur et inférieur. Ajustez la scène et faites la mise au point pour une visualisation optimale. Attendez environ 5 à 20 minutes pour que les cellules et les billes se stabilisent à leur position d’équilibre magnétique.