JoVE Encyclopedia of Experiments
Immunologie
0 vues • 4:38 min • July 8th, 2025
Prenez une colonne de chromatographie d’exclusion stérique remplie d’une matrice inerte de particules de résine polysaccharide. Les particules poreuses ont une taille de pore définie.
Rincez la colonne avec un tampon d’équilibrage pour une purification optimale.
Ajoutez un filtrat de culture concentré traité à partir d’une culture de Mycobacterium tuberculosis - une bactérie pathogène. Le filtrat contient des vésicules extracellulaires, ou VE, et d’autres protéines solubles sécrétées par les bactéries.
Les VE sont de petites structures sphériques de taille hétérogène. Ils contiennent des macromolécules et des facteurs de virulence enfermés dans une bicouche lipidique.
L’échantillon pénètre dans la matrice sous l’effet de la gravité. Ajoutez la mémoire tampon pour permettre le déplacement de l’échantillon dans la colonne.
Les VE ne peuvent pas pénétrer dans la résine en raison de la petite taille des pores et se déplacent plutôt dans l’espace interparticulaire, parcourant un chemin plus court et s’échappant en premier.
Les protéines, de plus petite taille, pénètrent dans les pores, parcourent un chemin plus long à travers la résine et s’éluent à la fin.
Collecter les fractions contenant des VE pour l’analyse en aval.
Laissez la chromatographie d’exclusion stérique, ou colonne SEC, s’équilibrer à température ambiante. Allumez l’AFC à l’aide de l’interrupteur d’alimentation situé à l’arrière de l’unité tour et appuyez sur SETUP sur l’écran tactile du menu principal si nécessaire pour régler les paramètres de la cellule de charge. À partir de l’écran CONFIGURATION, alignez le carrousel en sélectionnant CARROUSEL suivi de CALIBRER. Insérez le carrousel avec les 13 petits trous vers le haut dans la tour AFC et ajustez le carrousel en appuyant sur les boutons moins ou plus de sorte que la buse de fluide soit directement au-dessus de la position affleurante.
Retirez les capuchons de la colonne SEC équilibrée et faites glisser la colonne SEC dans le support de colonne approprié. Installez-le soigneusement sur la tour AFC. Assurez-vous que l’étiquette d’identification par radiofréquence sur la colonne fait face à l’AFC et vérifiez que la connexion entre la colonne et la vanne est sécurisée. Placez le tube de sortie des déchets dans un récipient de collecte. À partir de l’écran CONFIGURATION, sélectionnez Programme de collecte et réglez le nombre à 13 et la taille à 0,5 millilitre en appuyant sur les boutons moins ou plus.
Laissez le paramètre de volume de mémoire tampon par défaut de 2,7 millilitres, puis fermez la fenêtre Calendrier de collecte. Sélectionnez Démarrer la collecte sur l’écran d’accueil et confirmez les paramètres de collecte en sélectionnant Oui. Chargez 13 tubes de microcentrifugation de 1,7 millilitre étiquetés avec les couvercles ouverts et pointant vers le centre du carrousel. Faites avancer l’AFC en sélectionnant OK. Ensuite, montez le réservoir de colonne et avancez à nouveau en appuyant sur OK.
Sélectionnez l’option permettant de vider la colonne en appuyant sur Oui et d’ajouter un volume de colonne de PBS filtré à 0,2 micromètre pour supprimer toute mémoire tampon de stockage. Une fois le rinçage terminé, faites avancer l’AFC en appuyant sur OK. Placez le couvercle du carrousel sur l’AFC et appuyez sur OK. Utilisez une pipette pour retirer tout excès de tampon de la colonne. Apportez 3 milligrammes d’échantillon 100R à 500 microlitres avec 1x PBS, et ajoutez l’échantillon en haut de la colonne.
Préparez un volume de colonne de PBS filtré à 0,2 micromètre. Avancez l’AFC et laissez l’échantillon s’écouler dans la fritte. Une fois que l’échantillon est complètement entré dans la colonne, ajoutez le PBS préparé précédemment dans le réservoir. Surveillez l’exécution de l’AFC pendant qu’il collecte d’abord le volume vide, puis les fractions spécifiées. Une fois le parcours terminé et le carrousel de retour à la position de déchet, retirez le couvercle et les tubes de fraction du carrousel.
Cet article décrit le processus de purification des vésicules extracellulaires (EV) provenant de Mycobacterium tuberculosis en utilisant la chromatographie d'exclusion par taille (SEC). La méthodologie met en évidence la séparation des vésicules extracellulaires des protéines solubles selon leur taille, facilitant ainsi les analyses en aval.
La purification des vésicules extracellulaires (EV) de Mycobacterium tuberculosis par chromatographie d'exclusion stérique (SEC) répond à un besoin critique de préparations vésiculaires de haute pureté dans la recherche précoce sur les maladies infectieuses. Cette technique permet une isolation fiable des EV pour la caractérisation moléculaire en aval, soutenant ainsi les études mécanistiques et la validation des cibles dans les pipelines d'interaction pathogène-hôte. La purification des EV par SEC améliore la confiance prédictive en recherche translationnelle en fournissant des entrées standardisées et reproductibles pour les tests fonctionnels.
La purification des VEs basée sur la CEC s'inscrit à l'interface entre la phase de découverte précoce et la recherche préclinique, fournissant des éléments essentiels pour la validation des cibles, les études mécanistiques et le développement de tests.
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Dernière mise à jour : 29 août 2026