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Commencez par placer une lame de verre avec une monocouche endothéliale adhérente stimulée par des cytokines dans une chambre d’écoulement.
Ces cellules endothéliales expriment des molécules d’adhésion de surface, telles que les sélectines, et des signaux migratoires liés à l’endothélium, comme les chimiokines.
Introduisez des leucocytes marqués par fluorescence dans la chambre d’écoulement.
Lorsque les leucocytes s’écoulent sur la monocouche endothéliale, ils s’engagent avec les cellules endothéliales activées.
Les sélectines sur les cellules endothéliales se lient à leurs ligands correspondants sur les leucocytes.
Les interactions sélectine-ligand sont faibles et transitoires, ce qui permet aux leucocytes de rouler le long de la monocouche endothéliale sous la force d’un milieu en écoulement.
Le roulement permet aux leucocytes d’interagir avec les chimiokines, activant les intégrines et favorisant l’arrêt ferme des leucocytes.
Par la suite, les leucocytes se propagent à travers la monocouche endothéliale, ce qui signifie leur potentiel de transmigration, une étape cruciale dans la réponse immunitaire.
Ce test permet d’étudier le mécanisme d’adhésion, de désadhésion et de transmigration des leucocytes tout en les perfusant sur les cellules endothéliales.
Utilisez une micromolaire de colorant d’acide nucléique fluorescent vert perméable à la cellule pour marquer les leucocytes par fluorescence. Après l’étiquetage, incubez les leucocytes pendant 30 minutes à 37 degrés Celsius. Ensuite, centrifugez les cellules à 300 fois g pendant 5 minutes pour granuler les cellules.
Remettre en suspension dans une solution saline tamponnée au phosphate pour laver les cellules. Ensuite, centrifugez les cellules à 300 fois g pendant 5 minutes. En fonction du débit, suspendre 5 millilitres des cellules dans le tampon de dosage. Ensuite, faites chauffer un bain-marie pour maintenir 37 degrés Celsius.
Ensuite, mettez de côté une seringue de perfusion de 50 millilitres et installez-la sur le porte-seringue. Ensuite, réglez la pompe en mode de retrait, avec le volume de la pompe à 0 millilitre et le diamètre à 26,70 millimètres. Ensuite, fixez un coupleur Luer-lock à la seringue et connectez le tube avec le connecteur Luer coudé au coupleur Luer-lock. Ensuite, fixez l’extrémité libre du tube à la chambre d’écoulement. Pour faire adhérer les leucocytes aux plaquettes immobilisées, connectez la lame à la seringue.
Pour perfuser les leucocytes et ensuite adhérer à un lit de monocouche vasculaire ou plaquettaire, fixez un deuxième tube à un tube conique de 50 millilitres contenant le tampon de dosage, puis remplissez le tube à l’aide d’une pipette de 1 millilitre. Une fois le tube rempli, pressez-le et connectez-le à la chambre d’écoulement. Avant de perfuser les leucocytes, ajoutez 3 millimolaires de chlorure de calcium et 2 millimolaires de chlorure de magnésium à la suspension cellulaire. Ensuite, incubez les cellules à 37 degrés Celsius pendant 5 minutes.
Pour éliminer l’air éventuellement coincé dans la chambre et dans le tube, perfuser avec un tampon de dosage avant de perfuser les cellules. Ensuite, pressez les tubes pour fermer l’extrémité et faites passer le tube du tampon de test à la suspension cellulaire, empêchant ainsi les bulles d’air emprisonnées à l’intérieur.
Pour que les premières cellules arrivent, perfuser les cellules à un débit et à une contrainte de cisaillement appropriés. Continuez à perfuser les cellules, en maintenant le débit et la contrainte de cisaillement pendant deux minutes. Ensuite, capturez six images des cellules roulantes et dissuasives entre 2 et 6 minutes à l’aide d’un microscope à fluorescence avec un grossissement de 10 fois connecté à un appareil photo numérique.