Essai de microdilution en bouillon in vitro pour le criblage de composés antifongiques

0 vues3:48 min • July 8th, 2025

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Prenez une plaque de microtitration et ajoutez des dilutions en série de nouveaux peptides antimicrobiens ou AMP, les composés de test.

Désignez un sous-ensemble de puits comme témoins de croissance et ajoutez de l’eau stérile sans les SAP.

Ajouter un champignon pathogène en suspension dans un milieu de culture dans des puits sélectionnés.

Ajoutez uniquement le milieu, dépourvu de champignon, dans un sous-ensemble de puits désignés comme témoins vierges.

Scellez la plaque et incubez dans des conditions humides propices à la croissance fongique.

Après l’incubation, observez les puits au microscope.

Les témoins de croissance semblent troubles en raison de la croissance fongique en l’absence de SAP. La turbidité de toutes les dilutions d’un AMP indique son inefficacité contre le champignon.

Les témoins à blanc, dépourvus de croissance fongique, semblent clairs. Comparez les puits d’essai avec les témoins à blanc pour confirmer l’absence de croissance, indiquant l’activité antifongique des AMP.

La concentration la plus faible d’un AMP qui inhibe la croissance fongique est appelée concentration minimale inhibitrice, ou CMI.

Le dosage de l’antifongique est effectué en trois exemplaires dans des microplaques de polystyrène de 96 puits en utilisant une dilution en série de 2 fois de chaque peptide et antifongique de contrôle et un volume final de 50 microlitres par puits.

L’étape la plus cruciale du protocole est les dilutions en série. Soyez donc très prudent lors des prochaines étapes pour éviter toute erreur qui compromettrait l’ensemble de votre analyse.

À l’aide d’une pipette, ajoutez 100 microlitres de peptide antifongique à la concentration double de la concentration finale la plus élevée souhaitée dans les colonnes un à trois de la rangée A. À l’aide d’une pipette multicanaux, ajoutez 50 microlitres d’eau stérile dans les autres puits des rangées B à H. Retirez 50 microlitres des puits avec la concentration la plus élevée, transférer dans les puits correspondants de la concentration suivante et homogénéiser en pipetant plusieurs fois de haut en bas.

Répétez la dilution en série jusqu’à ce que les puits avec la concentration la plus faible soient atteints, et jetez 50 microlitres de ces puits. Laissez les colonnes 11 et 12 des rangées A, B et C avec seulement de l’eau pour les témoins à blanc ou les témoins à croissance négative. Ajouter 50 microlitres de l’inoculum ajusté à la double intensité dans RPMI1640 milieu à chaque puits des colonnes 1 à 3 plus la colonne 11.

La concentration finale pour C. albicans sera de 2 000 cellules par millilitre, et la concentration finale pour C. neoformans sera de 10 000 cellules par millilitre. Préparez des contrôles de croissance négatifs en mélangeant 50 microlitres d’eau et 50 microlitres d’inoculum ajusté sans l’antifongique. Préparez des contrôles à blanc en combinant 50 microlitres d’eau et 50 microlitres de milieu sans cellules.

Chargez les commandes dans les puits appropriés. Observez tous les puits à l’aide d’un microscope optique inversé, puis incubez les plaques à 37 degrés avec agitation à 200 tr/min. Après la période d’incubation, observez à nouveau tous les puits pour vérifier les changements de morphologie, ainsi que pour vérifier les signes de contamination.

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Dernière mise à jour : 15 août 2026